Preview

Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО

Расширенный поиск

Оценка развития метаболических нарушений при хроническом воздействии малых доз аминной соли 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты в эксперименте

https://doi.org/10.35627/2219-5238/2023-32-7-34-39

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Введение. 2,4-дихлорфеноксиуксусная кислота относится к числу наиболее распространенных загрязнителей окружающей среды из группы хлорорганических гербицидов. В работе изучено влияние малых доз 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты на метаболические показатели, которые изучены в меньшей степени.

Цель исследования. Оценка развития метаболических нарушений при хроническом воздействии малых доз аминной соли 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты в эксперименте.

Материалы и методы. Исследование проведено на 36 самцах-крыс Wistar в течение 16 недель в весенне-летний период 2022 года (11.04–31.07), суточный цикл: день/ночь – 12/12. Критерии включения животных: здоровые, масса тела (170 ± 3) г, критерии исключения: масса животного более 173 и менее 167 г, признаки болезни. Животные были разделены на контрольную группу № 1 (18 животных), опытную группу № 2 (18 животных), которая употребляла питьевую воду с содержанием 0,5 ПДК 2,4-ДА (0,3–0,4 мкг/кг/день). На 14-й неделе у животных проведен тест на толерантность к глюкозе. Для оценки развития метаболических нарушений проведено определение в сыворотке крови следующих параметров: общий белок, альбумин, креатинин, мочевая кислота, активность аспарагиновой и аланиновой трансаминаз, щелочной фосфатазы, лактатдегидрогеназы, общий холестерин, холестерин липопротеинов высокой плотности, липопротеинов очень низкой и низкой плотности, триацилглицеринов. Анализ данных проведен в программе Statistica 10.0. Данные соответствовали нормальному распределению (критерий хи-квадрат) и представлены в виде средней (М) и стандартной ошибки среднего (m).

Результаты исследования показали снижение уровня общего белка и альбумина, умеренное повышение активности сывороточных ферментов – аланинаминотрансферазы, аспартатаминотрансферазы, щелочной фосфатазы и лактатдегидрогеназы. Одновременно с этим развивалась гиперхолестеринемия, триацилглицеридемия и дислипопротеинемия. Под влиянием малых доз 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты у животных развивалась инсулинорезистентность, оцениваемая по глюкозотолерантному тесту. Основные параметры хемилюминесценции в сыворотке крови – спонтанная светимость, амплитуда быстрой вспышки и светосумма у животных опытной группы были в 2,4; 9,3 и 4,1 раза выше соответственно. В опытной группе наблюдалось снижение сывороточного железа на 20 % и повышение ферритина на 12 %.

Заключение. Длительное поступление в организм 2,4-ДА в дозах 0,3–0,4 мкг/кг приводило к повышению маркеров метаболических нарушений, которые могут быть использованы для диагностики и оценки состояния метаболических процессов в организме.

Для цитирования:


Карманова Д.С., Боева Т.В., Кряжев Д.А., Боев В.М., Борщук Е.Л. Оценка развития метаболических нарушений при хроническом воздействии малых доз аминной соли 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты в эксперименте. Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2024;32(7):34-39. https://doi.org/10.35627/2219-5238/2023-32-7-34-39

For citation:


Karmanova D.S., Boeva V.B., Kryazhev D.A., Boev V.M., Borshchuk E.L. Assessment of the Development of Metabolic Disorders Following Chronic Low-Dose Exposure to the Amine Salt of 2,4-Dichlorophenoxyacetic Acid in the Animal Experiment. Public Health and Life Environment – PH&LE. 2024;32(7):34-39. (In Russ.) https://doi.org/10.35627/2219-5238/2023-32-7-34-39

Введение. Одним из наиболее опасных для здоровья населения веществ является аммониевая соль 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты (2,4-ДА) [1]. В то же время подавляющее большинство исследований оценивает негативное влияние 2,4-ДА на здоровье человека с точки зрения его канцерогенности и тератогенности [2][3], тогда как в литературе появляется все больше сведений о его токсичности в отношении различных органов и систем [4]. В частности, поступление с питьевой водой высоких концентраций 2,4-ДА приводит к изменениям в геноме [5], развитию некроза [6] и апоптоза [7].

Ранее было показано, что потребление животными воды, содержащей 2,4-ДА в малых количествах, вызывало развитие инсулинорезистентности [8], а также нарушения активности ферментов метаболизма жирных кислот [9].

Следует отметить, что, как правило, установленные эффекты 2,4-ДА касаются высоких доз, тогда как имеющиеся в литературе данные свидетельствуют о необходимости изучения влияния на организм данного хлорорганического ароматического соединения при низких воздействиях. В то же время вопрос, вызывают ли низкие дозы 2,4-ДА при продолжительном введении в организм метаболические нарушения, изучен недостаточно полно, что и послужило основанием для проведения настоящего исследования [10][11].

Цель исследования состояла в оценке развития метаболических нарушений при хроническом воздействии малых доз аминной соли 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты в эксперименте.

Материалы и методы. Методологической основой исследования явилось экспериментальное моделирование метаболических процессов, определяющих биохимические параметры крови в организме животного, при воздействии малых доз 2,4-ДА. Исследование продолжительностью 16 недель проводилось в весенне-летний период 2022 года (11.04–31.07).

Экспериментальное моделирование основано на концепции три R (3R), описанной У.М.С. Расселом и Р.Л. Берчем в 1959 году, в которую входят: 1) замена (Replacement), 2) сокращение (Reduction) и 3) усовершенствование (Refinement). В эксперименте использована биологическая модель первого порядка – лабораторные животные, с последующей экстраполяцией данных на человека. Исследование проведено на животных (36 самцов-крыс Vistar). До начала эксперимента масса животных составляла 170 г. Содержание животных осуществлялось в виварии с соблюдением суточного цикла (день/ночь – 12/12). Все животные составляли две группы: группа № 1 – контрольная группа (18 крыс-самцов), группа № 2 – опытная группа (18 крыс-самцов). Животные группы № 2 употребляли питьевую воду, обогащенную 2,4-ДА в концентрации, равной 0,5 ПДК согласно СанПиНу 1.2.3685–211.

На 14-й неделе эксперимента у 50 % экспериментальных животных каждой опытной группы проведен тест на толерантность к глюкозе (ТТГ). Спустя 16 недель животных обеих экспериментальных групп вывели путем декапитации, используя фторотановый наркоз.

Анализ сыворотки крови проведен с использованием оборудования Cobas-6000 фирмы Roche (Швейцария) с применением специальных наборов реагентов. Проведено исследование сыворотки крови на содержание общего белка, альбумина, креатинина, мочевой кислоты, активности аспарагиновой и аланиновой трансаминаз АлАТ и АсАТ, щелочной фосфатазы (ЩФ), лактатдегидрогеназы (ЛДГ), концентрации общего холестерина (ХС) и его фракций – холестерина липопротеинов высокой плотности (ЛПВП), липопротеинов очень низкой и низкой плотности (ЛПОНП и ЛПНП), триацилглицеринов (ТАГ).

Проведенные процедуры с экспериментальными животными, а также условия содержания соответствовали всем этическим нормами и правилам «Европейской конвенции защиты позвоночных животных, используемых в экспериментальных и других научных целях» (Страсбург, Франция, 1986 год) и лабораторной практики, определенными Минздравом России (приказ Минздрава России от 01.04.2016 № 199н) (заключение локального этического комитета ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет» Минздрава России № 291 от 14.02.2022).

Анализ полученных данных проведен с использованием пакета программ Statistica 10.0. Полученные данные концентраций исследуемых компонентов сыворотки крови соответствовали нормальному распределению (использован критерий хи-квадрат). Оценка и представление полученных значение проведено с использованием средней (М) и стандартной ошибки среднего (m). Для оценки достоверности различий применен параметрический t-критерий Стьюдента при р ≤ 0,05.

Ограничение исследования. Данные получены на ограниченном объеме выборки, который составил 36 особей в целом (опыт/контроль), что определяет необходимость проведения более углубленных исследований по оценке метаболических нарушений на репрезентативной выборке, а также в условиях комплексного воздействия изучаемого токсиканта (2,4-ДА). Исследование охватывает неполный перечень показателей, отражающих метаболические сдвиги в организме животных, тем не менее полученные данные в показателях обуславливают перспективы проведения и расширения эксперимента.

Результаты. После завершения эксперимента, через 16 недель полученные результаты, представленные в таблице 1 следует, что у крыс, потреблявших воду, содержащую 2,4-ДА в количестве 0,3–0,4 мкг/кг, отмечалось снижение концентрации белка в сыворотке крови на 24 %, а содержание альбумина было ниже на 10 %, чем в контроле. Содержание мочевины при этом в опытной и контрольной группах находилось в пределах нормы, но вместе с тем было ниже у животных, получавших 2,4-ДА, на 28 %. Уровень сывороточного креатинина в группах не отличался, а мочевой кислоты у крыс, получавших 2,4-ДА, был в 1,7 раза ниже, чем у интактных.

Далее из данных таблицы видно, что поступление в организм животных малых доз 2,4-ДА приводило к увеличению активности сывороточных ферментов, при этом активность АсАТ у крыс опытной группы была на 48 % выше, чем в контроле, АлАТ – на 13 %, ЩФ – на 8,6 %, а ЛДГ – на 22 %.

Длительное поступление малых доз 2,4-ДА не приводило к изменению уровня общего холестерина в сыворотке крови, но оказывало существенное влияние на его распределение по фракциям. Из материалов таблицы видно, что содержание у опытных животных ХС ЛПВП было ниже, чем в контроле, на 16 %. В итоге индекс атерогенности у крыс опытной серии был в 2 раза выше, чем у интактных животных.

Уровень ТАГ у получавших 2,4-ДА крыс был на 18 % соответственно выше, чем в контроле.

Следующий раздел таблицы отражает данные по содержанию в крови животных железа и ферритина. Видно, что длительное поступление в организм 2,4-ДА в малых дозах приводило к снижению сывороточного железа примерно на 20 %. Одновременно с этим концентрация ферритина у опытных животных, напротив, была на 12 % выше, чем у контрольных крыс.

Основные параметры, характеризующие процессы свободно-радикального окисления в сыворотке крови, – спонтанная светимость, амплитуда быстрой вспышки и светосумма – у животных опытной группы были в 2,4; 9,3 и 4,1 раза выше соответственно, чем в контроле. Другими словами, хроническое поступление в организм животных малых доз 2,4-ДА приводило к повышению интенсивности свободнорадикальных процессов, накоплению перекисных соединений и снижению мощности механизмов антирадикальной защиты.

При проведении на 14-й неделе теста на толерантность к глюкозе изменения ее концентрации в крови у интактных животных характеризовались подъемом к 30-й минуте после перорального введения, а затем снижением практически до исходных значений через 2 часа (рисунок).

Из рис. 1 видно, что уровень глюкозы натощак у интактных и опытных животных не отличался.

Кривая, отражающая изменения концентрации глюкозы у получавших 2,4-ДА животных, характеризовалась, во-первых, более высокими значениями к 30-й минуте после перорального введения, а во-вторых, более медленным снижением ее уровня на последующих сроках. При этом к 180-й минуте теста сывороточные значения глюкозы в опытной группе на 1,25 ммоль/л превышали показатели контрольной группы.

Таблица. Биохимические показатели сыворотки крови у крыс при потреблении воды, содержащей 2,4-ДА (M ± m)

Table. Biochemical parameters of blood serum in rats following oral exposure to 2,4-DA in water (M ± m)

Показатели, ед. / Indicators, units

Интактные / Intact (Control) n = 18

2,4-ДА / 2,4-DA exposure n = 18

Общий белок, г/л / Total protein, g/L

73,0 ± 1,4

55,7 ± 0,58

Альбумин, г/л / Albumin, g/L

31,2 ± 0,81

22,4 ± 0,23*

Мочевина, ммоль/л / Urea, mmol/L

5,4 ± 0,11

4,9 ± 0,09*

Креатинин, ммоль/л / Creatinine, mmol/L

35,0 ± 1,41

35,3 ± 1,47

Мочевая кислота, ммоль/л / Uric acid, mmol/L

121,3 ± 9,1

72,3 ± 7,1*

АСАТ, ед./л / Aspartate transaminase, U/L

122,5 ± 5,9

181,0 ± 11,0*

АЛАТ, ед./л / Alanine transaminase, U/L

49,7 ± 2,3

56,03 ± 2,3

ЩФ, ед./л / Alkaline phosphatase, U/L

143,6 ± 2,0

156,0 ± 5,0*

ЛДГ, ед./л / Lactate dehydrogenase, U/L

534,0 ± 18,0

649,0 ± 17,0*

Общий ХС, моль/л / Total cholesterol, mol/L

1,51 ± 0,1

1,4 ± 0,06

ХС ЛПВП, моль/л / High density lipoprotein cholesterol, mol/L

1,44 ± 0,06

1,21 ± 0,03*

ХС ЛПНП, моль/л / Low density lipoprotein cholesterol, mol/L

0,23 ± 0,031

0,18 ± 0,03

ХС ЛПОНП, моль/л / Very low density lipoprotein cholesterol, mol/L

0,4 ± 0,018

0,49 ± 0,025*

ИА / Atherogenic index of plasma

0,035 ± 0,003

0,07 ± 0,02*

ТГ, моль/л / Triacylglycerols, mol/L

0,93 ± 0,01

1,1 ± 0,03*

Железо в сыворотке, мкмоль/л / Serum iron, µmol/L

23,5 ± 1,9

19,1 ± 0,3*

Ферритин, мкг/л / Ferritin, µg/L

125,5 ± 5,8

140,8 ± 4,7*

Спонтанная светимость, усл.ед. / Spontaneous luminescence, CU

1,04 ± 0,06

2,1 ± 0,2*

Быстрая вспышка, усл.ед. / Fast flash, CU

1,34 ± 0,25

12,7 ± 2,7*

Светосумма, усл.ед. / Light sum, CU

221 ± 31

616 ± 98*

Примечание: * – уровень статистической значимости р ≤ 0,05.

Notes: * р ≤ 0.05.

Рисунок. Концентрация глюкозы в крови крыс при проведении теста на толерантность к глюкозе

Figure. Blood glucose levels in rats measured in the glucose tolerance test

Обсуждение. Полученные результаты свидетельствуют о том, что хроническое поступление в организм с питьевой водой 2,4-ДА в количестве 41–54 мкг/кг приводит к выраженным метаболическим изменениям у животных. Наблюдается повышение уровня маркеров метаболических нарушений, которые впоследствии могут стать причиной развития более серьезных заболеваний.

Данные изменения характеризовались снижением уровня общего белка происходящего за счет фракции альбумина, уровня мочевины и мочевой кислоты, чем в контроле. Эти перечисленные признаки могут свидетельствовать о некотором снижении метаболических процессов, протекающих в печени. Прежде всего, это касается процессов синтеза альбумина и мочевины, а также катаболизма пуриновых нуклеотидов.

Следует отметить, что эти изменения, носящие достоверный характер, происходят на фоне умеренной гиперферментемии, оцениваемой по активности АсАТ, АлАТ, ЩФ и ЛДГ, что может быть свидетельством повышения проницаемости мембран гепатоцитов [12].

С изменением функции печени, вероятно, могут быть связаны и наблюдаемая дислипопротеинемия, проявляющаяся снижением доли антиатерогенной фракции холестерина, представленной ЛПВП и увеличением индекса атерогенности, а также повышению концентрации ТАГ.

Наконец, потребление воды на протяжении 16 недель, содержащей невысокие концентрации 2,4-ДА, приводило к развитию инсулинорезистентности, оцениваемой по тесту на толерантность к глюкозе.

Другими словами, длительное поступление в организм 2,4-ДА в дозах 0,3–0,4 мкг/кг приводило как к изменению уровня маркеров метаболических нарушений, связанных с нарушениями обмена веществ в организме. Таким образом, основными маркерами вероятности развития метаболических нарушений при воздействии гербицида 2,4-ДА на организм животных явились: снижение содержание белка в сыворотке крови; увеличение АсАТ, АлАТ, ЩФ, ЛДГ, ТАГ; снижение сывороточного железа.

Поскольку в исследовании показано развитие окислительного стресса у экспериментальных животных по результатам хемилюминесценции в сыворотке крови, есть основание считать, что малые дозы 2,4-ДА при длительном поступлении в организм реализуют метаболические нарушения через активацию свободнорадикальных процессов.

Согласно современным представлениям, одним из основных механизмов общетоксического действия 2,4-ДА считается его способность вызывать окислительный стресс. Данное состояние, в свою очередь, реализуется под влиянием редокс-активных метаболитов, образующихся в процессе биотрансформации 2,4-ДА в микросомах печени при участии фракции 2Е1 Р450 [13][14]. Следует отметить, что характер превращений не зависит от количества поступающего поллютанта.

Следствием снижения железа может быть нарушение биосинтеза гемоглобина и образования эритроцитов. Механизм, через который длительное поступление малых доз 2,4-ДА вызывает дефицит железа, может быть связан с нарушением его всасывания в кишечнике [15][16]. Известно, что данный процесс регулируется гормоном гепсидином, вырабатываемым в печени, и зависит от его состояния [17]. В свою очередь, образование активных кислородных метаболитов в процессе биотрансформации ксенобиотиков, и в частности 2,4-ДА, может быть одной из причин нарушения структуры и функции гепатоцитов и приводить к нарушению синтеза этого гормона, ответственного за всасывание ионов двухвалентного железа в эритроцитах [18].

В то же время увеличение уровня ферритина в сыворотке крови, которое мы наблюдали у крыс, получавших 2,4-ДА, следует расценивать не с точки зрения повышения запасов железа в организме, а с позиции того, что данный белок является внутриклеточным и его повышение в крови есть результат повреждения гепатоцитов. Такой механизм повышения уровня ферритина в сыворотке крови, не связанный с увеличением запасов железа в организме, был показан при различных заболеваниях печени. Поскольку нами было показано, что повреждение гепатоцитов, оцениваемое по критерию гиперферментемии, происходило при длительном поступлении в организм малых доз 2,4-ДА, есть основание считать, что наблюдаемое в наших исследованиях повышение уровня ферритина в сыворотке крови отражает состояние мембран гепатоцитов, а не гомеостаз железа [19–25].

Заключение. В целом результаты данного исследования позволяют сделать вывод о том, что длительное поступление в организм веществ в количествах, которые принято считать нетоксичными, в частности 2,4-ДА, не остаются незамеченными для организма.

Особенно это положение актуально для ксенобиотиков, процесс биотрансформации которых приводит к образованию токсичных метаболитов. Это обстоятельство, на наш взгляд, делает необходимым изменение подходов к оценке безопасности для организма человека и животных различных поллютантов и их концентрации в окружающей среде.

1 СанПиН 1.2.3685–21 «Гигиенические нормативы и требования к обеспечению безопасности и (или) безвредности для человека факторов среды обитания». М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2022. 668 с.

Список литературы

1. Жолдакова З.И., Синицына О.О., Мамонов Р.А., Лебедь-Шарлевич Я.И., Печникова И.А. Совершенствование требований к контролю за применением хлорсодержащих средств обеззараживания воды // Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2019. №12. С.30-35. doi: 10.35627/2219-5238/2019-321-12-30-35

2. Schinasi L and Leon ME. Non-Hodgkin lymphoma and occupational exposure to agricultural pesticide chemical groups and active Ingredients: A systematic review and meta-analysis. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2014; 11(4):4449–4527. doi: 10.3390/ijerph110404449

3. Sameshima K, Kobae H, Fofana D, Yoshidome K, Nishi J, Miyata K. Effects of pure 2,4-dichlorophenoxyacetic acid on cultured rat embryos. Congenit Anom (Kyoto). 2004;44(2):93-6. doi: 10.1111/j.1741-4520.2004.00014.x

4. Singla S, Malvia S, Bairwa RP, Asif M, Goyal S. A rare case 2,4 Dichlorphenoxyacetic acid (2, 4-D) poisoning. Int J Contemp Pediatr. 2017;4:1532-3. doi:10.18203/2349-3291.ijcp20172701

5. Venkov P, Topas-Ancheva M, Georgieva M, Alexieva V, Karanov E. Genotoxic effect of substituted phenoxyacetic acids. Arch Toxicol. 2000;74(9):560-6. doi: 10.1007/s002040000147

6. Bongiovanni B, Ferri A, Brusco A, et al. Adverse effects of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid on rat cerebellar granule cell cultures were attenuated by amphetamine. Neurotox Res. 2011;19(4):544-55. doi: 10.1007/s12640-010-9188-9

7. Harris SA, Villeneuve PJ, Crawley CD, et al. National study of exposure to pesticides among professional applicators: an investigation based on urinary biomarkers. J Agric Food Chem. 2010;58(18):10253-61. doi: 10.1021/jf101209g

8. Красиков С. И., Боев М. В. Влияние воды, содержащей органические соединения, на развитие инсулинорезистентности в модельном эксперименте // Анализ риска здоровью - 2020: Материалы X Всероссийской научно-практической конференции с международным участием /Под редакцией А.Ю. Поповой, Н.В. Зайцевой. Том 2. Пермь: Пермский национальный исследовательский политехнический университет, 2020. С. 450-455.

9. Yilmaz B, Terekeci H, Sandal S, Kelestimur F. Endocrine disrupting chemicals: exposure, effects on human health, mechanism of action, models for testing and strategies for prevention. Reviews in Endocrine and Metabolic Disorders. 2019;21(1): 127–147. doi:10.1007/s11154-019-09521-z

10. Lee D.-H, Steffes MW, Sjödin A, et al. Low Dose Organochlorine Pesticides and Polychlorinated Biphenyls Predict Obesity, Dyslipidemia, and Insulin Resistance among People Free of Diabetes. PLoS ONE. 2011; 6(1):e15977. doi:10.1371/journal.pone.0015977

11. Mostafalou S and Abdollahi M.. Pesticides: an update of human exposure and toxicity. Archives of Toxicology. 2016;91(2):549–599. doi:10.1007/s00204-016-1849-x

12. Toz H and Değer Y. The Effect of Chitosan on the Erythrocyte Antioxidant Potential of Lead Toxicity-Induced Rats. Biological Trace Element Research. 2017;184(1): 114–118. doi:10.1007/s12011-017-1164-2

13. Robin MA, Sauvage I, Grandperret T, et al. Ethanol increases mitochondrial cytochrome P450 2E1 in mouse liver and rat hepatocytes. FEBS Lett. 2005;579(30):6895-902. doi: 10.1016/j.febslet.2005.11.0292005

14. Tayeb W, Nakbi A, Cheraief I, Miled A, Hammami M. Alteration of lipid status and lipid metabolism, induction of oxidative stress and lipid peroxidation by 2,4-dichlorophenoxyacetic herbicide in rat liver. Toxicol Mech Methods. 2013;23(6):449-58. doi: 10.3109/15376516.2013.780275

15. Dongiovanni P, Fracanzani AL, Fargion S, Valenti L. Iron in fatty liver and in the metabolic syndrome: A promising therapeutic target. J Hepatol. 2011;55(4):920-32. doi: 10.1016/j.jhep.2011.05.008

16. Green A, Basile R, Rumberger JM. Transferrin and iron induce insulin resistance of glucose transport in adipocytes. Metabolism. 2006;55:1042–1045. doi: 10.1016/j.jhep.2011.05.008

17. Kim KH, Kabir E, Jahan SA. Exposure to pesticides and the associated human health effects. Science of The Total Environment. 2017; 575(1):525–535. doi: 10.1016/j.scitotenv.2016.09.009

18. Bukowska B, Kowalska S. The presence and toxicity of phenol derivatives – their effect on human erythrocytes.Current Topics in Biophysics. 2003;27(1-2):43–48.

19. Schreinemachers DM. Perturbation of lipids and glucose metabolism associated with previous 2,4-D exposure: a crosssectional study of NHANES III data, 1988–1994. Environ Health. 2010;9:11. doi: 10.1186/1476-069X-9-11

20. Kahn SE, Cooper ME, Prato SD. Pathophysiology and treatment of type 2 diabetes: perspectives on the past, present, and future. The Lancet. 2014; 383 (9922):1068–1083. doi: 10.1016/S0140-6736(13)62154-6

21. Kleinert M, Clemmensen C, Hofmann SM, et al. Animal models of obesity and diabetes mellitus. Nat Rev Endocrinol. 2018;14(3):140-162. doi: 10.1038/nrendo.2017.161

22. Yaribeygi H, Farrokhi FR, Butler AE, Sahebkar A. Insulin resistance: Review of the underlying molecular mechanisms. J Cell Physiol. 2019;234(6):8152-8161. doi: 10.1002/jcp.27603

23. Blüher M. Obesity: global epidemiology and pathogenesis. Nat Rev Endocrinol. 2019;15(5):288-298.doi: 10.1038/s41574-019-0176-8

24. Zhang R, Hou T, Cheng H, Wang X. NDUFAB1 protects against obesity and insulin resistance by enhancing mitochondrial metabolism. FASEB J. 2019;33(12):13310-13322. doi: 10.1096/fj.201901117RR

25. Berthoud H-R, Morrison CD, Münzberg H. The obesity epidemic in the face of homeostatic body weight regulation: What went wrong and how can it be fixed? Physiol Behav. 2020;222:112959. doi: 10.1016/j.physbeh.2020.112959


Об авторах

Д. С. Карманова
ФГБОУ ВО ОрГМУ Минздрава России
Россия

Карманова Дарья Сергеевна – к.м.н., доцент кафедры химии

ул. Советская, д. 6, г. Оренбург, 460014



Т. В. Боева
ФГБОУ ВО ОрГМУ Минздрава России
Россия

Боева Татьяна Валерьевна – аспирант кафедры общей гигиены

ул. Советская, д. 6, г. Оренбург, 460014



Д. А. Кряжев
ФГБОУ ВО ОрГМУ Минздрава России
Россия

Кряжев Дмитрий Александрович – к.м.н., доцент кафедры общей и коммунальной гигиены

ул. Советская, д. 6, г. Оренбург, 460014



В. М. Боев
ФГБОУ ВО ОрГМУ Минздрава России
Россия

Боев Виктор Михайлович – д.м.н., профессор, заслуженный деятель науки РФ, заслуженный работник высшей школы РФ, заведующий кафедрой общей и коммунальной гигиены

ул. Советская, д. 6, г. Оренбург, 460014



Е. Л. Борщук
ФГБОУ ВО ОрГМУ Минздрава России
Россия

Борщук Евгений Леонидович – д.м.н., профессор, заведующий кафедрой общественного здоровья и здравоохранения № 1

ул. Советская, д. 6, г. Оренбург, 460014



Дополнительные файлы

Рецензия

Для цитирования:


Карманова Д.С., Боева Т.В., Кряжев Д.А., Боев В.М., Борщук Е.Л. Оценка развития метаболических нарушений при хроническом воздействии малых доз аминной соли 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты в эксперименте. Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2024;32(7):34-39. https://doi.org/10.35627/2219-5238/2023-32-7-34-39

For citation:


Karmanova D.S., Boeva V.B., Kryazhev D.A., Boev V.M., Borshchuk E.L. Assessment of the Development of Metabolic Disorders Following Chronic Low-Dose Exposure to the Amine Salt of 2,4-Dichlorophenoxyacetic Acid in the Animal Experiment. Public Health and Life Environment – PH&LE. 2024;32(7):34-39. (In Russ.) https://doi.org/10.35627/2219-5238/2023-32-7-34-39

Просмотров: 129


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2219-5238 (Print)
ISSN 2619-0788 (Online)