Preview
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

Роль растворимых молекул CD25, CD38, CD95 в формировании иммуносупрессии при цитомегаловирусной инфекции

https://doi.org/10.35627/2219-5238/2021-337-4-74-78

Полный текст:

Аннотация

Введение. Инфицирование цитомегаловирусом (ЦМВ), принадлежащим к бета-герпесвирусам, широко распространено в человеческой популяции и приближается у пожилых лиц к 100 %. Обычно инфекция протекает в латентной форме, но при развитии иммуносупрессии способна к реактивации. Механизмы реактивации до конца не изучены. Целью настоящей работы явилось исследование роли растворимых молекул CD25, CD38, CD95 в формировании иммуносупрессии при цитомегаловирусной инфекции. Материалы и методы. В работе использовали образцы сыворотки крови больных с цитомегаловирусной инфекцией в стадии реактивации, подтвержденной c помощью клинических и лабораторных данных. Больные проходили лечение в Инфекционной клинической больнице № 2 г. Нижнего Новгорода. Сывороточное содержание суммарных и олигомерных растворимых молекул CD25, CD38 и CD95 определяли иммуноферментным методом с помощью моноклональных антител и поликлональных антител, направленных против белков мононуклеарных клеток периферической крови человека. Результаты регистрировали спектрофотометрически и оценивали, переводя единицы оптической плотности в условные единицы (U/ml). Результаты. Показано, что у больных с реактивацией цитомегаловирусной инфекции происходит повышение сывороточного содержания суммарной и олигомерной фракций растворимых молекул CD25, CD38 и CD95. Если сывороточное содержание суммарной и олигомерной фракций молекул CD25 и CD38 повышается в одинаковой степени, то для олигомерной фракции молекул CD95 обнаружено более выраженное повышение в сравнении с суммарной фракцией. Полученные данные позволяют предположить наличие при цитомегаловирусной инфекции механизма супрессии иммунного ответа, связанного с инициацией апоптоза эффекторных Т-лимфоцитов с участием олигомерной формы молекул CD95. Заключение. Изменения в содержании и структурно-функциональном состоянии растворимых дифференцировочных молекул CD25, CD38 и CD95 свидетельствуют об их участии в механизмах иммуносупрессии у больных с цитомегаловирусной инфекцией.

Об авторах

В. В. Новиков
ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора; ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет им. Н.И. Лобачевского» Минобрнауки России
Россия

Новиков Виктор Владимирович – д.б.н., профессор, заведующий лабораторией иммунохимии; профессор кафедры молекулярной биологии и иммунологии

ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород, 603950

пр. Гагарина, д. 23, г. Нижний Новгород, 603950



Г. А. Кравченко
ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет им. Н.И. Лобачевского» Минобрнауки России
Россия

Кравченко Галина Анатольевна – к.б.н, доцент; доцент кафедры молекулярной биологии и иммунологии

пр. Гагарина, д. 23, г. Нижний Новгород, 603950



Д. М. Собчак
ФГБОУ ВО «Приволжский исследовательский медицинский университет» Минздрава России
Россия

Собчак Девора Михайловна – д.м.н., профессор; профессор кафедры инфекционных болезней

пл. Минина и Пожарского, д. 10/1, г. Нижний Новгород, 603005



Д. В. Новиков
ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора
Россия

Новиков Дмитрий Викторович – к.б.н., доцент; вед. науч. сотр. 

ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород, 603950



С. В. Шумилова
ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет им. Н.И. Лобачевского» Минобрнауки России
Россия

Шумилова Светлана Викторовна – к.б.н., ст. науч. сотр. 

пр. Гагарина, д. 23, г. Нижний Новгород, 603950



Список литературы

1. Ziemann M, Thiele T. Transfusion-transmitted CMV infection – current knowledge and future perspectives. Transfus Med. 2017; 27(4):238–248. doi: 10.1111/tme.12437

2. Dioverti MV, Razonable RR. Cytomegalovirus. Microbiol Spectr. 2016;4(4). doi: 10.1128/microbiolspec.DMIH20022-2015

3. Silva JM, Pinheiro-Silva R, Dhyani A, Pontes GS. Cytomegalovirus and Epstein-Barr infections: prevalence and impact on patients with hematological diseases. Biomed Res Int. 2020;2020:1627824. doi: 10.1155/2020/1627824

4. Vauloup-Fellous C, Berth M, Heskia F, Dugua JM, Grangeot-Keros L. Re-evaluation of the VIDAS (®) cytomegalovirus (CMV) IgG avidity assay: determination of new cut-off values based on the study of kinetics of CMV-IgG maturation. J Clin Virol. 2013;56(2):118–23. doi: 10.1016/j.jcv.2012.10.017

5. Kabani N, Ross SA. Congenital cytomegalovirus infection. J Infect Dis. 2020;5:221(Suppl 1):S9–S14. doi: 10.1093/infdis/jiz446

6. Lindemann M, Korth J, Sun M, Xu S, Struve C, Werner K, et al. The cytomegalovirus-specific IL-21 ELISpot correlates with allograft function of kidney transplant recipients. Int J Mol Sci. 2018;19(12):3945. doi: 10.3390/ijms19123945

7. Leruez-Ville M, Foulon I, Pass R, Ville Y. Cytomegalovirus infection during pregnancy: state of the science. Am J Obstet Gynecol. 2020;223(3):330–349. doi: 10.1016/j.ajog.2020.02.018

8. Afshari A, Yaghobi R, Karimi MH, Darbouy M, Azarpira N, Geramizadeh B, et al. IL-17 mRNA expression and cytomegalovirus infection in liver transplant patients. Exp Clin Transplant. 2015;13(Suppl 1):83–89.

9. Dornieden T, Wilde B, Korth J, Werner K, Horn PA, Witzke O, et al. Enhancement of cytomegalovirusspecific cytokine production after modulation of the costimulation in kidney transplant patients. J Immunol Res. 2019;2019:3926175. doi: 10.1155/2019/3926175

10. Klenerman P, Oxenius A. T cell responses to cytomegalovirus. Nat Rev Immunol. 2016;16(6):367–77. doi: 10.1038/nri.2016.38

11. Лебедев М.Ю., Шолкина М.Н., Новиков Д.В., Шумилова С.В., Новиков В.В., Караулов А.В. Сывороточное содержание растворимых молекул СD25 и CD95 у ожоговых больных // Вестник Российской академии медицинских наук. 2017. Т. 72. № 4. С. 276–281.

12. Ma A, Zhang L, Ye X, Chen J, Yu J, Zhuang L, et al. High levels of circulating IL-8 and soluble IL-2R are associated with prolonged illness in patients with severe COVID-19. Front Immunol. 2021;12:626235. doi: 10.3389/fimmu.2021.626235

13. Vanmaris RMM, Rijkers GT. Biological role of the soluble interleukin-2 receptor in sarcoidosis. Sarcoidosis Vasc Diffuse Lung Dis. 2017;34(2):122–129. doi: 10.36141/svdld.v34i2.5369

14. Sun HL, Ma CJ, Du XF, Yang S-Y, Lv X, Zhao H, et al. Soluble IL-2Rα correlates with imbalances of Th1/ Th2 and Tc1/Tc2 cells in patients with acute brucellosis. Infect Dis Poverty. 2020;9(1):92. doi: 10.1186/s40249-02000699-y

15. Marcante R, Cavedon G. Soluble CD4, CD8 and interleukin-2 receptor levels in patients with acute cytomegalovirus mononucleosis syndrome. Allergol Immunopathol (Madr). 1991;19(3):99–102.

16. Zedtwitz-Liebenstein K, Diab-Elschahaw M, Frass M. Human cytomegalovirus infection in nonimmunocompromised patients: a retrospective analysis and review of the literature. Intervirology. 2016;59(3):159–162. doi: 10.1159/000454772

17. Da Cunha T, Wu GY. Cytomegalovirus hepatitis in immunocompetent and immunocompromised hosts. J Clin Transl Hepatol. 2021;9(1):106–115. doi: 10.14218/JCTH.2020.00088

18. Komura T, Kagaya T, Takayama H, Yanagi M, Yoshio T, Sugimoto S, et al. Clinical features and dynamics of T cells-related markers in immunocompetent patients with cytomegalovirus hepatitis. Can J Gastroenterol Hepatol. 2020;2020:8874620. doi: 10.1155/2020/8874620

19. Новиков В.В., Макарова Е.В., Шумилова С.В. Красногорова Н.В., Варварина Г.Н. Растворимые дифференцировочные молекулы как биомаркеры при ХОБЛ. Аллергология и иммунология. 2017. Т. 18. № 3. С. 157–160.

20. Новиков В.В., Евсегнеева И.В. Новые дифференцировочные антигены человека, утвержденные на VII Международном Воркшопе // Российский биотерапевтический журнал. 2003. Т. 2. № 3. С. 3–6.

21. Lebedev MJu, Egorova NI, Sholkina MN, Vilkov SA, Baryshnikov AJu, Novikov VV. Serum levels of different forms of soluble CD38 antigen in burned patients. Burns. 2004;30(6):552–556. doi: 10.1016/j.burns.2004.01.029

22. Голенков А.К., Митина Т.А., Новиков В.В., Тагиров О.Т., Королева В.В., Крыжанов М.А. и др. Клиническое значение растворимых молекул адгезии (sCD50 ICAM 3), апоптоза (sCD95) и sHLA класса I при лимфопролиферативных заболеваниях // Российский биотерапевтический журнал. 2002. Т. 1. № 1. С. 60–64.

23. Vincent FB, Kandane-Rathnayake R, Koelmeyer R, et al. Associations of serum soluble Fas and Fas ligand (FasL) with outcomes in systemic lupus erythematosus. Lupus Sci Med. 2020;7(1):e000375. doi: 10.1136/lupus-2019-000375

24. Ptitsina YuS, Bornyakova LA, Baryshnikov AYu, Martynova TG, Kryzhanova MA, Novikov VV. A soluble form of FAS/APO-1(CD95) antigen in the serum of viral hepatitis patients. International Journal on Immunorehabilitation. 1999;(14):110.

25. Wang Y, Liu Y, Han R, Li Q, Yao Z, Niu W, et al. Monitoring of CD95 and CD38 expression in peripheral blood T lymphocytes during active human cytomegalovirus infection after orthotopic liver transplantation. J Gastroenterol Hepatol. 2010;25(1):138–42. doi: 10.1111/j.14401746.2009.05966.x


Для цитирования:


Новиков В.В., Кравченко Г.А., Собчак Д.М., Новиков Д.В., Шумилова С.В. Роль растворимых молекул CD25, CD38, CD95 в формировании иммуносупрессии при цитомегаловирусной инфекции. Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2021;(4):74-78. https://doi.org/10.35627/2219-5238/2021-337-4-74-78

For citation:


Novikov V.V., Kravchenko G.A., Sobchak D.M., Novikov D.V., Shumilova S.V. The Role of Soluble Molecules CD25, CD38, and CD95 in the Development of Immunosuppression in Cytomegalovirus Infection. Public Health and Life Environment – PH&LE. 2021;(4):74-78. https://doi.org/10.35627/2219-5238/2021-337-4-74-78

Просмотров: 62


ISSN 2219-5238 (Print)
ISSN 2619-0788 (Online)