Preview

Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО

Расширенный поиск

Исследование циркуляции S. epidermidis и S. haemolyticus в детском стационаре

https://doi.org/10.35627/2219-5238/2021-337-4-18-24

Аннотация

Введение. Среди инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, значительное место занимают стафилококковые. Возбудителями воспалительных процессов у новорожденных часто выступают коагулазонегатив­ные стафилококки, ведущая роль среди которых принадлежит S. epidermidis и S. haemolyticus. В связи с этим представ­ляется актуальным исследование циркуляции данных микроорганизмов в педиатрических стационарах с помощью внутривидового дифференцирования, основанного на сопоставлении спектров их внеклеточных белков. Цель исследования – изучение циркуляции штаммов S. epidermidis и S. haemolyticus в детском стационаре методом электрофоре­типирования их внеклеточных белков. Материалы и методы. Исследованы 277 штаммов S. haemolyticus и 267 штаммов S. epidermidis, выделенных в детском стационаре от больных и с предметов окружающей среды. Получены внекле­точные белки изолятов, проведен их электрофоретический анализ в полиакриламидном геле. Определена антибио­тикорезистентность и способность к формированию биопленки. Результаты. Анализ электрофореграмм внеклеточ­ных белков стафилококков позволил выявить группы идентичных штаммов. Изоляты от разных пациентов были объединены в 21 группу S. haemolyticus, включающую 69 штаммов, и 13 групп S. epidermidis, включающих 38 штаммов. Все эти культуры были метициллинрезистентными, за исключением одной группы из двух штаммов S. haemolyticus. Более половины культур, сгруппированных по спектрам внеклеточных белков, были полирезистентны. Абсолютное большинство штаммов S. haemolyticus (97,2 %) и три четверти штаммов S. epidermidis (76,0 %) обладали способностью к формированию биопленки. Средние значения степени пленкообразования у штаммов S. haemolyticus были достовер­но выше, чем у S. epidermidisВыводы. Из всех исследованных культур стафилококков 25 % штаммов S. haemolyticus и 14 % S. epidermidis длительно циркулировали в детском стационаре, из них 88,4 % штаммов гемолитического и 42,1 % эпидермального стафилококка – более месяца, а 21,7 % штаммов S. haemolyticus и 21,1 % S. epidermidis – в течение года. Эти культуры отличались метициллинрезистентностью, а изоляты гемолитического стафилококка – высокой способностью к образованию биопленки.

Об авторах

Е. В. Беляева
ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора
Россия

Беляева Елена Вячеславовна – к.б.н., ст. наун. сотр., вед. науч. сотр. лаборатории микробиологии

ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород



Г. Б. Ермолина
ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора
Россия

Ермолина Галия Бариевна – к.б.н., ст. науч. сотр. лаборатории микробиологии

ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород



Е. В. Борискина
ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора
Россия

Борискина Елена Владимировна – мл. науч. сотр. лаборатории микробиологии

ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород



И. С. Шкуркина
ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора
Россия

Шкуркина Ирина Сергеевна – мл. науч. сотр. лаборатории микробиологии

ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород



В. С. Кропотов
ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора
Россия

Кропотов Василий Сергеевич – к.б.н., ст. науч. сотр. лаборатории микробиологии

ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород



Список литературы

1. Божкова С.А., Полякова Е.М., Краснова М.В. Преодоление устойчивости к гентамицину у метициллинорезистентных штаммов стафилококка // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2017. № 8-1. С. 97–103.

2. Присакарь В.И., Буга Д.В., Сава В.И. Внутрибольничные инфекции, вызванные метициллинрезистентными стафилококками (MRS) // Журнал МедиАль. 2018. № 2. С. 8–11.

3. Lee JYH, Monk IR, Gonçalves da Silva A, et al. Global spread of three multidrug-resistant lineages of Staphylococcus epidermidis. Nat Microbiol. 2018;3(10):1175–1185. doi: 10.1038/s41564-018-0230-7

4. Покровский В.И., Акимкин В.Г., Брико Н.И., Брусина Е.Б., Зуева Л.П., Ковалишена О.В. и др. Национальная концепция профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, и информационный материал по ее положениям. Нижний Новгород: Ремедиум Приволжье, 2012. 84 с.

5. Любасовская Л.А., Корниенко М.А., Припутневич Т.В., Ильина Е.Н., Щеголев А.И. Микробиологическая и молекулярно-генетическая характеристика коагулазонегативных стафилококков, выделенных у новорождённых отделения реанимации и интенсивной терапии // Антибиотики и химиотерапия. 2013. Т. 58. № 3-4. С. 25–32.

6. Rampelotto RF, Lorenzoni VV, Silva DDC, et al. Assessment of different methods for the detection of biofilm production in coagulase-negative staphylococci isolated from blood cultures of newborns. Rev Soc Bras Med Trop. 2018;51(6):761–767. doi: 10.1590/00378682-0171-2018

7. Шайхразиева Н.Д., Булычева И.А., Лопушов Д.В., Сабаева Ф.Н. Этиологическая структура и антибиотикорезистентность госпитальных штаммов микроорганизмов в отделении анестезиологии и реанимации // Медицинский альманах. 2019. № 1 (58). С. 32–34.

8. Беляева Е.В., Ермолина Г.Б., Борискина Е.В., Кряжев Д.В., Шкуркина И.С. Мониторинг биопленкообразующей способности у циркулирующих в детском стационаре коагулазонегативных стафилококков // Медицинский альманах. 2018. № 4 (55). С. 26–30.

9. Брико Н.И., Брусина Е.Б., Зуева Л.П., Ковалишена О.В., Ряпис Л.А., Стасенко В.Л. и др. Госпитальный штамм – непознанная реальность // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2013. № 1 (68). С. 30–35.

10. Shrestha LB, Bhattarai NR, Khanal B. Antibiotic resistance and biofilm formation among coagulasenegative staphylococci isolated from clinical samples at a tertiary care hospital of eastern Nepal. Antimicrob Resist Infect Control. 2017;6:89. doi: 10.1186/s13756-017-0251-7

11. Manandhar S, Singh A, Varma A, Pandey S, Shrivastava N. Evaluation of methods to detect in vitro biofilm formation by staphylococcal clinical isolates. BMC Res Notes. 2018;11(1):714. doi: 10.1186/s13104-018-3820-9

12. Rajivgandhi G, Maruthupandy M, Muneeswaran T, Anand M, Quero F, Manoharan N, et al. Biosynthesized silver nanoparticles for inhibition of antibacterial resistance and biofilm formation of methicillin-resistant coagulase negative Staphylococci. Bioorg Chem. 2019;89:103008. doi: 10.1016/j.bioorg.2019.103008

13. França A, Gaio V, Lopes N, Melo L. Virulence factors in coagulase-negative staphylococci. Pathogens. 2021;10(2):170. doi: 10.3390/pathogens10020170

14. Дегтева Г.К., Беляева Е.В., Ермолина Г.Б. Белковые системы бактерий. Роль в таксономии и эпидемиологической практике. Н. Новгород: Изд-во Нижегор. госуниверситета им. Н.И. Лобачевского, 1999. 138 с.

15. Кузнецова М.В., Николаева Н.В., Розанова С.М., Карпунина Т.И. Формирование биопленок нозокомиальными штаммами Pseudomonas aeruginosa // Журнал Микробиологии, Эпидемиологии и Иммунобиологии. 2011. № 4. С. 8–14.

16. Гостев В.В., Калиногорская О.С., Круглов А.Н., Сидоренко С.В. Антибиотикорезистентность коагулазоотрицательных стафилококков, выделенных в стационарах Санкт-Петербурга и Москвы // Антибиотики и химиотерапия. 2015. Т. 60, № 9-10. C. 23–28.

17. Петрухина М.И., Мартынова А.М., Политова Н.Г., Ющенко Г.В., Старостина Н.В. Сравнительный анализ микроорганизмов, выделенных от больных в отделениях реанимации разного профиля // Медицинский альманах. 2016. № 3 (43). С. 17–20.

18. Граничная Н.В., Зайцева Е.А., Пятко В.Э. Микробиологический мониторинг и антибиотикорезистентность коагулазонегативных стафилококков, выделенных от пациентов кардиохирургического стационара // Здоровье. Медицинская экология. Наука. 2017. № 1 (68). С. 24–29.

19. Bora P, Datta P, Gupta V, Singhal L, Chander J. Characterization and antimicrobial susceptibility of coagulase-negative staphylococci isolated from clinical samples. J Lab Physicians. 2018;10(4):414–419. doi: 10.4103/JLP.JLP_55_18

20. Омарова С.М., Алиева С.Ф., Османов А.С. Мониторинг антибиотикорезистентных стафилококков, возбудителей внутрибольничного инфицирования пациентов отделения челюстно-лицевой хирургии // Международный научно-исследовательский журнал. 2017. № 2-2 (56). С. 30–33.

21. Salgueiro VC, Iorio NL, Ferreira МС, Chamon RC, Santos KR. Methicillin resistance and virulence genes in invasive and nasal Staphylococcus epidermidis isolated from neonates. BMC Microbiol. 2017;17(1):15. doi: 10.1186/s12866-017-0930-9

22. Deyno S, Fekadu S, Seyfe S. Prevalence and antimicrobial resistance of coagulase negative staphylococci clinical isolates from Ethiopia: a meta-analysis. BMC Microbiol. 2018;18(1):43. doi: 10.1186/s12866-018-1188-6

23. Chon J-W, Lee UJ, Bensen R, West S, Paredes A, Lim J, et al. Virulence characteristics of mecApositive multidrug-resistant clinical coagulase-negative staphylococci. Microorganisms. 2020;8(5):659. doi: 10.3390/microorganisms8050659

24. Leclercq R, Cantón R, Brown DFJ, Giske CG, Heisig P, MacGowan AP, et al. EUCAST expert rules in antimicrobial susceptibility testing. Clin Microbiol Infect. 2013;19(2):141-60. doi: 10.1111/j.1469-0691.2011.03703.x

25. Зырянов С.К., Сычев И.Н., Гущина Ю.Ш. Современные проблемы инфекций, вызванных MRSA и пути их решения // Антибиотики и химиотерапия. 2017. Т. 62. № 7-8. С. 69–79.

26. Сергевнин В.И., Клюкина Т.В., Зуева Н.Г., Волкова Э.О. Устойчивость к дезинфицирующим средствам госпитального штамма Staphylococcus haemolyticus, выделенного в акушерском стационаре при неединичной заболеваемости новорожденных гнойно-септическими инфекциями // Здоровье населения и среда обитания. 2012. № 7 (232). С. 18–20.

27. Белова Е.О. Биопленочные инфекции в педиатрии // Бюллетень медицинских Интернет-конференций. 2019. Т. 9. № 12. С. 574–576.

28. Беляева Е.В., Ермолина Г.Б., Шкуркина И.С., Борискина Е.В., Кряжев Д.В. Оценка чувствительности к дезинфектантам коагулазонегативных стафилококков, циркулирующих в детском стационаре // Здоровье населения и среда обитания. 2019. № 8 (317). С. 20–24.

29. Kitti T, Seng R, Thummeepak R, Boonlao C, Jindayok T, Sitthisak S. Biofilm formation of methicillin-resistant coagulase-negative staphylococci isolated from clinical samples in Northern Thailand. J Global Infect Dis. 2019;11(3):112–117. doi: 10.4103/jgid.jgid_118_18

30. Корниенко М.А., Копыльцов В.Н., Шевлягина Н.В. Диденко Л.В., Любасовская Л.А., Припутневич Т.В. и др. Способность стафилококков различных видов к образованию биопленок и их воздействие на клетки человека // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2016. Т. 34. № 1. С. 18–25.


Рецензия

Для цитирования:


Беляева Е.В., Ермолина Г.Б., Борискина Е.В., Шкуркина И.С., Кропотов В.С. Исследование циркуляции S. epidermidis и S. haemolyticus в детском стационаре. Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2021;(4):18-24. https://doi.org/10.35627/2219-5238/2021-337-4-18-24

For citation:


Belyaeva E.V., Ermolina G.B., Boriskina E.V., Shkurkina I.S., Kropotov V.S. The Study of Persistence of S. epidermidis and S. haemolyticus in a Children’s Hospital. Public Health and Life Environment – PH&LE. 2021;(4):18-24. (In Russ.) https://doi.org/10.35627/2219-5238/2021-337-4-18-24

Просмотров: 2136


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2219-5238 (Print)
ISSN 2619-0788 (Online)