Антибиотикочувствительность холерных вибрионов non-O1/non-O139 серогрупп, изолированных из гидроэкосистем

Введение. Широкое распространение штаммов Vibrio cholerae non-O1/non-O139, устойчивых к антибактериальным препаратам (АБП), вариабельность спектра антибиотикоустойчивости вызывают интерес и требуют проведения мониторинговых региональных исследований. Цель - накопление базовой информации о состоянии чувствительности /устойчивости к АБП холерных вибрионов non-O1/non-O139 серогрупп, выделенных из водоемов г. Ростова-на-Дону. Материалы и методы. Отбор проб проводили в стационарных точках открытых водоемов с мая по сентябрь 2016-2018 гг. Чувствительность/устойчивость штаммов V. cholerae non-O1/non-O139 определяли к АБП, рекомендованным для экстренной профилактики и лечения холеры, методом серийных разведений на агаре Мюллера - Хинтона. Результаты. Установлено, что в изучаемый период среди 361 выделенного штамма V. cholerae non-O1/non-O139 доминировали представители О16 и О76 серогрупп. Монорезистентные фенотипы представлены штаммами, устойчивыми к фуразолидону. Выводы. Зафиксировано статистически значимое увеличение с 2016 по 2018 г. доли штаммов, устойчивых к налидиксовой кислоте (с 4,0 % до 13,3 %) и хлорамфениколу (с 0,5 % до 4,4 %). Резистентность к двум АБП зафиксирована более чем у трети штаммов. Чаще всего встречались фенотипы: «котримоксазол / фуразолидон» и «фуразолидон /ампициллин». В 2016 г. доля таких фенотипов составила 21,4 % и 14,8 %, в 2017 г. - 20,0 % и 10,6 %, а в 2018 г. - 20,0 % и 15,5 % соответственно. При анализе микроорганизмов, чувствительных к трем и более АБП, выявленных с 2016 по 2018 г., были зарегистрированы статистически значимые различия, что свидетельствует о нарастании множественно резистентных микроорганизмов, относящихся к холерным вибрионам non-O1/ non-O139 серогрупп.

Vibrio cholerae non-O1/non-O139, чувствительность, резистентность, мониторинг, антибактериальные препараты, Vibrio cholerae non-O1/non-O139 serogroups, sensitivity, resistance, monitoring, antibacterial drugs

1. Виноградова К.А., Булгакова В.Г., Полин А.Н. и др. Устойчивость микроорганизмов к антибиотикам: резистома, ее объем, разнообразие и развитие // Антибиотики и химиотерапия. 2013. Т. 58. № 56. С. 38-48.

2. Монахова Е.В., Архангельская И.В. Холерные вибрионы неO1/неO139 серогрупп в этиологии острых кишечных инфекций: современная ситуация в России и в мире // Проблемы особо опасных инфекций. 2016. № 2. С. 14-23.

3. Утепова И.Б., Сагиев З.А., Алыбаев С.Д. и др. Характеристика штаммов холерных вибрионов, выделенных на территории Казахстана // ACTA BIOMEDICA SCIENTIFICA. 2017. Т. 2. № 5. Ч. 1. С. 100-105.

4. Селянская Н.А., Веркина Л.М., Архангельская И.В. и др. Мониторинг антибиотикорезистентности штаммов холерных вибрионов неО1/не О139 серогрупп, выделенных из объектов окружающей среды в Ростовской области в 2011-2014 гг. // Здоровье населения и среда обитания. 2015. № 7 (268). С. 33-36.

5. Захарова И.Б., Водяницкаям С.Ю., Подшивалова М.В. и др. Молекулярногенетическая характеристика штаммов Vibrio cholerae nonO1/nonO139, выделенных из балластных вод судов и акватории портов Ростовской области // Эпидемиология и инфекционные болезни. 2015. T. 20. № 3. С. 47-50.

6. Авдеева Е.П., Мазрухо Б.Л., Ишина Е.В. и др. Оценка метода серологической идентификации Vibrio cholerae не О1 // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2001. № 4. С.75-78.

7. Березняк Е.А., Тришина А.В., Селянская Н.А. и др. Антибиотикочувствительность штаммов Vibrio cholerae nonO1/nonO139, изолированных из гидроэкосистем в 2016-2017 гг. в Ростове-на-Дону // Журнал микробиология, эпидемиология и иммунобиология. 2019. № 2. С. 87-91.

8. Григоренко Л.В., Кругликов В.Д., Мазрухо А.Б. и др. Холерные вибрионы неО1/неО139, выделенные в ходе мониторинга водоемов и стоков Ростова-на-Дону с 2009 по 2011 год // Проблемы особо опасных инфекций. 2013. № 4. С. 48-50.

9. Bassetti M, Pecori D, Peghin M. Multidrugresistant Gramnegative bacteriaresistant infections: epidemiology, clinical issues and therapeutic options. Ital J Med. 2016; 10(4):364375. DOI: https://doi.org/10.4081/itjm.2016.802

10. Curcio D. Multidrugresistant Gramnegative bacterial infections: are you ready for the challenge? Curr Clin Pharmacol. 2014; 9(1):2738. DOI: https://doi.org/10. 2174/15748847113089990062

11. World Health Organization. Global Action Plan on Antimicrobial Resistance. Available at: https://www. who.int/antimicrobialresistance/globalactionplan/en/ Accessed: 17 Feb 2020.

12. World Economic Forum. Available at: https://www. weforum.org/events/worldeconomicforumannualmeeting2018. Accessed: 17 Feb 2020.

13. Delgado Gardea MC, Tamez Guerra P, Gomez Flores R, et al. Multidrugresistant bacteria isolated from surface water in Bassaseachic Falls National Park, Mexico. Int J Environ Res Public Health. 2016; 13(6):E597. DOI: https://doi.org/10.3390/ijerph13060597

14. Newton A, Kendall M, Vugia DJ, et al. Increasing rates of vibriosis in the United States, 1996-2010: review of surveillance data from 2 systems. Clin Infect Dis. 2012; 54(Suppl 5):S391-S395. DOI: https://doi.org/10.1093/ cid/cis243

15. Ottaviani D, Leoni F, Rocchegiani E, et al. Prevalence and virulence properties of nonO1 nonO139 Vibrio cholerae strains from seafood and clinical samples collected in Italy. Int J Food Microbiol. 2009; 132(1):47-53. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2009.03.014

16. Schirmeister F, Dieckmann R, Bechlars S, et al. Genetic and phenotypic analysis of Vibrio cholerae nonO1, nonO139 isolated from German and Austrian patients. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2014; 33(5):767-78. DOI: https://doi.org/10.1007/s1009601320119

17. Trubiano JA, Lee JY, Valcanis M, et al. NonO1, nonO139 Vibrio cholerae bacteraemia in an Australian population. Intern Med J. 2014; 44(5):508-11. DOI: https://doi.org/10.1111/imj.12409

18. Siriphap A, Leekitcharoenphon P, Kaas RS, et al. Characterization and genetic variation of Vibrio cholerae isolated from clinical and environmental sources in Thailand. PLoS One. 2017; 12(1):e0169324. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0169324

19. Carraro N, Rivard N, Ceccarelli D, et al. IncA/C conjugative plasmids mobilize a new family of multidrug resistance islands in clinical Vibrio cholerae nonO1/ nonO139 isolates from Haiti. mBio. 2016; 7(4):e0050916. DOI: https://doi.org/10.1128/mBio.0050916

20. Mangat CS, Boyd D, Janecko N, et al. Characterization of VCC1, a novel ambler class A carbapenemase from Vibrio cholerae isolated from imported retail shrimp sold in Canada. Antimicrob Agents Chemother. 2016; 60(3):1819-25. DOI: https://doi.org/ 10.1128/AAC.0281215

21. Hammerl JA, Jäckel C, Bortolaia V, et al. Carbapenemase VCC1-producing Vibrio cholerae in coastal waters of Germany. Emerg Infect Dis. 2017; 23(10):1735-37. DOI: https://doi.org/10.3201/eid2310.161625

22. Meletis G. Carbapenem resistance: overview of the problem and future perspectives. Ther Adv Infect Dis. 2016; 3(1):1521. DOI: https://doi.org/10.1177/2049936115621709

23. Magiorakos AP, Srinivasan A, Carey RB, et al. Multidrugresistant, extensively drugresistant and pandrugresistant bacteria: an international expert proposal for interim standard definitions for acquired resistance. Clin Microbiol Infect. 2012; 18(3):268281. DOI: https://doi.org/10.1111/ j.14690691.2011.03570.x

24. Baron S, Lesne J, Jouy E, et al. Antimicrobial susceptibility of autochthonous aquatic Vibrio cholerae in Haiti. Front Microbiol. 2016; 7:1671. DOI: https://doi.org/10.3389/ fmicb.2016.01671