Preview

Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

Инфекционный мононуклеоз: эпидемиологические последствия диагностических ошибок

https://doi.org/10.35627/2219-5238/2023-31-6-63-69

Полный текст:

Аннотация

Введение. Инфекционный мононуклеоз – заболевание вирусной природы, клиническая картина которого включает в себя наличие лихорадки, тонзиллита, лимфаденопатии, гепато- и cпленомегалии. Весомая доля случаев инфекционного мононуклеоза по разным причинам остается нераспознанной. Наличие скрытых источников инфекции не позволяет в полной мере оценить эпидемическую обстановку и создает предпосылки к распространению возбудителей, в том числе внутри организованных коллективов детей и взрослых.

Цель исследования: охарактеризовать причины ошибок при постановке диагноза «инфекционный мононуклеоз» и их эпидемиологические последствия на примере медицинских организаций неинфекционного профиля.

Материалы и методы. Исследованы научные публикации, индексированные в международных (Web of Science, Scopus, PubMed) и в отечественной (РИНЦ) базах данных за 2012–2022 годы. Отбор литературных источников осуществлялся по ключевым словам и словосочетаниям: инфекционный мононуклеоз, диагностика инфекционного мононуклеоза, ошибки при постановке диагноза инфекционный мононуклеоз. В работе использовались 60 источников информации, при отборе которых преимущество отдавалось результатам исследований в России, представленным в журналах, входящих в ядро РИНЦ, а при отборе зарубежных публикаций – журналам, индексируемым в Web of Science и Scopus. Однако ограниченное число исследований, посвященных эпидемиологии ВЭБ-инфекции, как в нашей стране, так и за рубежом, не позволило полностью отобрать работы, входящие исключительно в ядро РИНЦ или Q1-Q2.

Результаты. Основной причиной ошибок при постановке диагноза инфекционный мононуклеоз является многообразие клинических проявлений, обусловленных различными этиологическими агентами, вызвавшими заболевание, возрастом и иммунологическим статусом пациента. К диагностическим ошибкам приводит низкая осведомленность медицинского персонала по вопросам клиники и лабораторной диагностики инфекционного мононуклеоза. Некорректная оценка эпидемической ситуации, наличие среди населения не выявленных и не учтенных источников инфекции наряду с многообразием клинических проявлений болезни, может стать причиной заноса возбудителей в медицинские организации неинфекционного профиля. Установлена возможность этиологических агентов инфекционного мононуклеоза использовать практически все известные механизмы передачи, из которых в медицинских организациях реализуются преимущественно аэрозольный и артифициальный. Отсутствие профилактических мероприятий, направленных на источник инфекции и восприимчивых лиц определяет меры, направленные на прерывание механизмов передачи, единственным возможным способом борьбы с распространением возбудителей инфекционного мононуклеоза.

Заключение. Выявленные ошибки при постановке диагноза «инфекционный мононуклеоз» могут стать причинами серьезных эпидемиологических последствий, включая внутрибольничное распространение возбудителей.

Для доступа к материалу требуется подписка или приобретенный доступ. Чтобы подтвердить подписку и доступ либо приобрести материал, пожалуйста, войдите в систему.

Об авторах

А. В. Тутельян
ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора; ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)
Россия

Тутельян Алексей Викторович – д.м.н., член-корр. РАН, заведующий лабораторией инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи; профессор кафедры эпидемиологии Института профессионального образования

Новогиреевская ул., д. 3а, г. Москва, 111123;

ул. Трубецкая, д. 8, стр. 1, г. Москва, 119048



Т. В. Соломай
ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора; ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова» Минобрнауки России
Россия

Соломай Татьяна Валерьевна – к.м.н., старший научный сотрудник лаборатории инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи; старший научный сотрудник лаборатории эпидемиологического анализа и мониторинга инфекционных заболеваний

Новогиреевская ул., д. 3а, г. Москва, 111123;

пер. Малый Казённый, д. 5а, г. Москва, 105064



С. Н. Кузин
ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора
Россия

Кузин Станислав Николаевич – д.м.н., профессор, заведующий лабораторией вирусных гепатитов

Новогиреевская ул., д. 3а, г. Москва, 111123



А. Н. Каира
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И. И. Мечникова» Минобрнауки России; ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России
Россия

Каира Алла Николаевна – д.м.н., заведующая лабораторией эпидемиологического анализа и мониторинга за инфекционными заболеваниями; профессор кафедры эпидемиологии

пер. Малый Казённый, д. 5а, г. Москва, 105064;

ул. Баррикадная, д. 2/1, стр. 1, г. Москва, 125993



Т. А. Семененко
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет); ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н. Ф. Гамалеи» Минздрава России
Россия

Семененко Татьяна Анатольевна – д.м.н., профессор, профессор кафедры инфектологии и вирусологии Института профессионального образования; руководитель отдела эпидемиологии

ул. Трубецкая, д. 8, стр. 1, г. Москва, 119048;

ул. Гамалеи, д. 18, г. Москва, 123098



Список литературы

1. Wreghitt TG, Teare EL, Sule O, Devi R, Rice P. Cytomegalovirus infection in immunocompetent patients. Clin Infect Dis. 2003;37(12):1603–1606. doi: 10.1086/379711

2. Bravender T. Epstein-Barr virus, cytomegalovirus, and infectious mononucleosis. Adolesc Med State Art Rev. 2010;21(2):251–264.

3. Tan JW, Hu JR. Fever with atypical lymphocytosis: pearls and pitfalls in Epstein-Barr virus serology. BMJ Case Rep. 2023;16(5):e250081. doi: 10.1136/bcr-2022-250081

4. Соломай Т.В., Симонова Е.Г., Семененко Т.А. Научное обоснование создания и перспективы развития системы эпидемиологического надзора за инфекцией, вызванной вирусом Эпштейна-Барр // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2022. Т. 21. № 1. С. 21–31. doi: 10.31631/2073-3046-2022-21-1-21-31

5. Соломай Т.В., Семененко А.В., Никитина Г.Ю., Шувалов А.Н. Прогнозные сценарии развития эпидемического процесса инфекции, вызванной вирусом Эпштейна-Барр, на этапе отсутствия мер специфической профилактики и при их внедрении // Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2023. Т. 13. № 1. С. 60–69. doi: 10.18565/epidem.2023.13.1.60–9

6. Ye Z, Chen L, Zhong H, Cao L, Fu P, Xu J. Epidemiology and clinical characteristics of Epstein-Barr virus infection among children in Shanghai, China, 2017–2022. Front Cell Infect Microbiol. 2023;13:1139068. doi: 10.3389/fcimb.2023.1139068

7. Tschopp R, König RS, Rejmer P, Paris DH. Myalgic encephalomyelitis/ chronic fatigue syndrome (ME/CFS): A preliminary survey among patients in Switzerland. Heliyon. 2023;9(5):e15595. doi: 10.1016/j.heliyon.2023.e15595

8. Sato A, Sano F, Takahashi H, Matsumoto N. Relapsing infectious mononucleosis-like symptoms associated with liver insufficiency in a chronic hepatitis B patient with common variable immunodeficiency. Am J Case Rep. 2022;23:e934003. doi: 10.12659/AJCR.934003

9. Rodrigues Santos L, Silva Cruz M, Veiga Ferraz R, Ferraz Moreira V, Castro A. Jaundice as a rare manifestation of Epstein-Barr virus primary infection. Cureus. 2021;13(6):e15609. doi: 10.7759/cureus.15609

10. Kim JM, Song CW, Song KS, Kim JY. Acute gastritis associated with Epstein-Barr virus infection in a child. Korean J Pediatr. 2016;59(Suppl 1):S68-S71. doi: 10.3345/kjp.2016.59.11.S68

11. Ming Y, Cheng S, Chen Z, et al. Infectious mononucleosis in children and differences in biomarker levels and other features between disease caused by Epstein-Barr virus and other pathogens: a single-center retrospective study in China. PeerJ. 2023;11:e15071. doi: 10.7717/peerj.15071

12. Gutiérrez-Vélez A, Castro-Rodríguez C, Jové-Blanco A, et al. Acute Epstein-Barr virus infection: Diagnostic challenge in young children, risk factors for hospitalisation and cytomegalovirus co-detection. Acta Paediatr. 2023;112(6):1287-1295. doi: 10.1111/apa.16760

13. Казанова А.С., Эбралидзе Л.К., Ведунова С.Л. и др. Герпесвирусные инфекции и гуморальный противовирусный иммунитет у больных с первым приступом эндогенного психоза // Санитарный врач. 2014. № 7. С. 45–53.

14. Пузырева Л.В., Сафонов А.Д. Инфекции, вызванные вирусом Эпштейна-Барра, у ВИЧ-инфицированных пациентов // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2016. № 6. С. 108–116.

15. Yoo SG, Han KD, Lee KH, et al. Epidemiological changes in cytomegalovirus end-organ diseases in a developed country: A nationwide, general-population-based study. J Microbiol Immunol Infect. 2022;55(5):812-819. doi: 10.1016/j.jmii.2021.08.004

16. Abidoye O, Raybon-Rojas E, Ogbuagu H. A rare case of Epstein-Barr virus: Infectious mononucleosis complicated by Guillain-Barré syndrome. Cureus. 2022;14(1):e21085. doi: 10.7759/cureus.21085

17. Zehr B, Brannock K, Wyma R, Kahwash SB. Differentiating fulminant EBV infection complicated by HLH from lymphoma: report of a case and a brief literature review. Diagn Pathol. 2023;18(1):28. doi: 10.1186/s13000-023-01307-x

18. Yusuf H, Kou A, Zelinskas C, et al. Secondary immune thrombocytopenic purpura due to primary Epstein–Barr virus infection. Cureus. 2022;14(6):e26112. doi: 10.7759/cureus.26112

19. Mussi-Pinhata MM, Yamamoto AY. Natural history of congenital cytomegalovirus infection in highly seropositive populations. J Infect Dis. 2020;221(Suppl 1):S15–S22. doi: 10.1093/infdis/jiz443

20. Leung J, Cannon MJ, Grosse SD, Bialek SR. Laboratory testing and diagnostic coding for cytomegalovirus among privately insured infants in the United States: a retrospective study using administrative claims data. BMC Pediatr. 2013;13:90. doi: 10.1186/1471-2431-13-90

21. Kap EJ, Konrad M, Kostev K. Clinical characteristics and sick leave associated with infectious mononucleosis in a real-world setting in Germany. Int J Clin Pract. 2021;75(10):e14690. doi: 10.1111/ijcp.14690

22. Miskovic R, Cirkovic A, Miljanovic D, et al. Epstein-Barr virus reactivation as a new predictor of achieving remission or lupus low disease activity state in patients with systemic lupus erythematosus with cutaneous involvement. Int J Mol Sci. 2023;24(7):6156. doi: 10.3390/ijms24076156

23. Соломай Т.В., Малахова М.В., Шитиков Е.А., Беспятых Д.А., Веселовский В.А., Семененко Т.А., Смирнова Д.И., Грачева А.В., Файзулоев Е.Б. Вирус Эпштейна-Барр: оценка вариабельности генов gp350 и EBNA2 // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2022. Т. 40. № 3. С. 32–40. doi: 10.17116/molgen20224003132

24. Larijani A, Kia-Karimi A, Roostaei D. Design of a multiepitopic vaccine against Epstein-Barr virus via computer-based methods. Front Immunol. 2023;14:1115345. doi: 10.3389/fimmu.2023.1115345

25. Жукова Э.В., Мирская М.А., Семененко А.В., Готвянская Т.П., Никитина Г.Ю. Оценка приверженности медицинского персонала мерам инфекционного контроля в условиях пандемии СOVID-19 // Санитарный врач. 2023. № 5. С. 275–283. doi: 10.33920/med08230501

26. Kollef MH, Torres A, Shorr AF, Martin-Loeches I, Micek ST. Nosocomial infection. Crit Care Med. 2021;49(2):169-187. doi: 10.1097/CCM.0000000000004783

27. Орлова О.А., Абрамов Ю.Е., Тутельян А.В. Гармонизация комплекса мероприятий по профилактике инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи родильницам и новорожденным, требованиям ВОЗ // Санитарный врач. 2023. № 4. С. 209–221. doi: 10.33920/med-08-2304-02

28. Werkneh AA, Islam MA. Post-treatment disinfection technologies for sustainable removal of antibiotic residues and antimicrobial resistance bacteria from hospital wastewater. Heliyon. 2023;9(4):e15360. doi: 10.1016/j.heliyon.2023.e15360

29. He W, Chen X, Cheng X, Li Y, Feng B, Wang Y. Exploring the effect of novel six moments on hand hygiene compliance among hospital cleaning staff members: a quasi-experimental study. Epidemiol Infect. 2023;151:e73. doi: 10.1017/S0950268823000602

30. Neuberger F, Grgic M, Diefenbacher S, et al. COVID-19 infections in day care centres in Germany: social and organisational determinants of infections in children and staff in the second and third wave of the pandemic. BMC Public Health. 2022;22(1):98. doi: 10.1186/s12889-021-12470-5

31. Pereira AR, Braga DFO, Vassal M, Gomes IB, Simões M. Ultraviolet C irradiation: A promising approach for the disinfection of public spaces? Sci Total Environ. 2023;879:163007. doi: 10.1016/j.scitotenv.2023.163007

32. Ryan CW. Decreased respiratory-related absenteeism among preschool students after installation of upper room germicidal ultraviolet light: Analysis of newly discovered historical data. Int J Environ Res Public Health. 2023;20(3):2536. doi: 10.3390/ijerph20032536

33. Abkar L, Zimmermann K, Dixit F, Kheyrandish A, Mohseni M. COVID-19 pandemic lesson learned – critical parameters and research needs for UVC inactivation of viral aerosols. J Hazard Mater Adv. 2022;8:100183. doi: 10.1016/j.hazadv.2022.100183

34. Lv M, Huang J, Chen H, Zhang TT. An excimer lamp to provide far-ultraviolet C irradiation for dining-table disinfection. Sci Rep. 2023;13(1):381. doi: 10.1038/s41598-023-27380-2

35. Stošić N, Popović J, Anđelković Apostolović M, et al. Effects of autoclave sterilization on cyclic fatigue resistance in 5 types of rotary endodontic instruments: An in vitro study. Med Sci Monit. 2023;29:e939694. doi: 10.12659/MSM.939694

36. Rowan NJ, Kremer T, McDonnell G. A review of Spaulding’s classification system for effective cleaning, disinfection and sterilization of reusable medical devices: Viewed through a modern-day lens that will inform and enable future sustainability. Sci Total Environ. 2023;878:162976. doi: 10.1016/j.scitotenv.2023.162976

37. Vetterlein MW, Trinh QD, Seisen T. Re: NIHR Global Research Health Unit on Global Surgery. Routine sterile glove and instrument change at the time of abdominal wound closure to prevent surgical site infection (ChEETAh): A pragmatic, cluster-randomised trial in seven low-income and middle-income countries. Lancet. 2022;400:1767-76. Eur Urol. 2023;83(6):e158. doi: 10.1016/j.eururo.2023.02.014

38. Murphy K. Ensuring effective infection prevention and control in the community. Nurs Stand. 2023;38(5):62-67. doi: 10.7748/ns.2023.e12158

39. Song U, Kim J. Recycling of anti-COVID-19 filtering facepiece respirators for use as preliminary water filters. Int J Environ Res. 2023;17(3):35. doi: 10.1007/s41742-023-00526-w

40. El-Sayyad GS, Elfadil D, Gaballah MS, et al. Implication of nanotechnology to reduce the environmental risks of waste associated with the COVID-19 pandemic. RSC Adv. 2023;13(18):12438-12454. doi: 10.1039/d3ra01052j

41. Sahun M, Privat-Maldonado A, Lin A, et al. Inactivation of SARS-CoV-2 and other enveloped and non-enveloped viruses with non-thermal plasma for hospital disinfection. ACS Sustain Chem Eng. 2023;11(13):5206-5215. doi: 10.1021/acssuschemeng.2c07622

42. Li S, Hu J, Aryee AA, Sun Y, Li Z. Three birds, one stone: Disinfecting and turning waste medical masks into valuable carbon dots for sodium hydrosulfite and Fe3+ detection enabled by a simple hydrothermal treatment. Spectrochim Acta A Mol Biomol Spectrosc. 2023;296:122659. doi: 10.1016/j.saa.2023.122659

43. Wild CEK, Wells H, Coetzee N, et al. End-user acceptability of personal protective equipment disinfection for potential reuse: a survey of health-care workers in Aotearoa New Zealand. Lancet Planet Health. 2023;7(2):e118-e127. doi: 10.1016/S2542-5196(22)00333-3

44. Соломай Т.В., Исаева Е.И., Ветрова Е.Н., Чернышова А.И., Семененко Т.А., Пантелеева Л.Г. Оценка эффективности средств химической дезинфекции в отношении вируса Эпштейна-Барр // Дезинфекционное дело. 2021. № 3. С. 40–48 doi: 10.35411/2076-457X-2021-3-40-48

45. Byrne A, Bush R, Johns F, Upadhyay K. Limited utility of serology and heterophile test in the early diagnosis of Epstein-Barr virus mononucleosis in a child after renal transplantation. Medicines (Basel). 2020;7(4):21. doi: 10.3390/medicines7040021

46. Alfieri C, Tanner J, Carpentier L, et al. Epstein-Barr virus transmission from a blood donor to an organ transplant recipient with recovery of the same virus strain from the recipient’s blood and oropharynx. Blood. 1996;87(2):812-817.

47. Kofahi RM, Kofahi HM, Sabaheen S, et al. Prevalence of seropositivity of selected herpesviruses in patients with multiple sclerosis in the North of Jordan. BMC Neurol. 2020;20(1):397. doi: 10.1186/s12883-020-01977-w

48. Forsell S, Lang N. Post-transplant lymphoproliferative disorders. Rev Med Suisse. 2023;19(827):964-968. doi: 10.53738/REVMED.2023.19.827.964

49. Yamada M, Macedo C, Louis K, et al. Distinct association between chronic Epstein-Barr virus infection and T cell compartments from pediatric heart, kidney, and liver transplant recipients. Am J Transplant. 2023;S1600-6135(23)00468-9. doi: 10.1016/j.ajt.2023.05.007

50. Zaffiri L, Messinger JE, Bush EJ, et al. Evaluation of host cellular responses to Epstein-Barr virus (EBV) in adult lung transplant patients with EBV-associated diseases. J Med Virol. 2023;95(4):e28724. doi: 10.1002/jmv.28724

51. Lindsay J, Yong MK, Greenwood M, et al. Epstein-Barr virus related post-transplant lymphoproliferative disorder prevention strategies in allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. Rev Med Virol. 2020;30(4):e2108. doi: 10.1002/rmv.2108

52. Dzhumabaeva BT, Tikhomirov DS, Biryukova LS, et al. Herpesviruses in patients after renal transplantation. Terapevticheskiy Arkhiv. 2021;93(11):1264-1270. (In Russ.) doi: 10.26442/00403660.2021.11.201164

53. Malhotra S, Negi G. Analysis of reasons of blood donor deferral at a tertiary care institute in India and its reflections on community health status. Asian J Transfus Sci. 2023;17(1):48-52. doi: 10.4103/ajts.AJTS_69_19

54. Ashipala DO, Joel MH. Factors contributing to the low number of blood donors among employed residents in Oshatumba village, Namibia. Afr J Prim Health Care Fam Med. 2023;15(1):e1-e8. doi: 10.4102/phcfm.v15i1.3680

55. Coyne D, Butler D, Meehan A, et al. The changing profile of SARS-CoV-2 serology in Irish blood donors. Glob Epidemiol. 2023;5:100108. doi: 10.1016/j.gloepi.2023.100108

56. Zhang N, Gao H, Gao H. Analysis of frequency and molecular genetics of Jk (a-b-) phenotype among blood donors from Jining area. Zhonghua Yi Xue Yi Chuan Xue Za Zhi. 2023;40(5):609-613. doi: 10.3760/cma.j.cn511374-20220329-00211

57. Traore L, Tao I, Bisseye C, et al. Molecular diagnostic of cytomegalovirus, Epstein Barr virus and Herpes virus 6 infections among blood donors by multiplex real-time PCR in Ouagadougou, Burkina Faso. Pan Afr Med J. 2016;24:298. doi: 10.11604/pamj.2016.24.298.6578

58. Zhang Y, Huang C, Zhang H, et al. Characteristics of immunological events in Epstein-Barr virus infection in children with infectious mononucleosis. Front Pediatr. 2023;11:1060053. doi: 10.3389/fped.2023.1060053

59. de Paor M, Boland F, Cai X, et al. Derivation and validation of clinical prediction rules for diagnosis of infectious mononucleosis: a prospective cohort study. BMJ Open. 2023;13(2):e068877. doi: 10.1136/bmjopen-2022-068877

60. Gao L, Rong X, He M, et al. Metagenomic analysis of potential pathogens from blood donors in Guangzhou, China. Transfus Med. 2020;30(1):61-69. doi: 10.1111/tme.12657


Рецензия

Для цитирования:


Тутельян А.В., Соломай Т.В., Кузин С.Н., Каира А.Н., Семененко Т.А. Инфекционный мононуклеоз: эпидемиологические последствия диагностических ошибок. Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2023;31(6):63-69. https://doi.org/10.35627/2219-5238/2023-31-6-63-69

For citation:


Tutelyan A.V., Solomay T.V., Kuzin S.N., Kaira A.N., Semenenko T.A. Infectious Mononucleosis: Epidemiological Consequences of Diagnostic Errors. Public Health and Life Environment – PH&LE. 2023;31(6):63-69. (In Russ.) https://doi.org/10.35627/2219-5238/2023-31-6-63-69

Просмотров: 105


ISSN 2219-5238 (Print)
ISSN 2619-0788 (Online)