Содержание
Перейти к:
Оценка эффективности инновационного способа снижения микробной обсемененности воздуха учебных помещений (сообщение 1)
В. В. Шкарин,
Н. И. Латышевская,
В. С. Замараев,
Л. А. Давыденко,
А. В. Беляева,
А. В. Засядкина,
В. М. Тарабанов https://doi.org/10.35627/2219-5238/2022-30-7-33-39
Аннотация
Введение. Санитарно-гигиеническое благополучие воздушной среды закрытых помещений различного предназначения – важнейшее направление профилактики распространения инфекций с аэрозольным механизмом передачи возбудителя.
Цель исследования: оценка эффективности инновационного способа снижения микробной обсемененности воздушной среды учебных помещений с использованием пленочного абсорбера оригинальной конструкции.
Материалы и методы. Выполнена оценка микробной обсемененности воздушной среды учебных помещений в холодный (январь-февраль 2021 г.) и теплый (апрель 2021 г.) периоды года. Использовался пленочный абсорбер оригинальной конструкции, в котором активным веществом является водный раствор хлористого лития. Микробную обсемененность воздушной среды определяли в динамике учебного дня при различных режимах его работы. Отбор проб и исследование воздуха проводились сертифицированными методами.
Результаты. Исследование микробной обсемененности воздуха учебных комнат показало наличие в большинстве проб 2–4-компонентных ассоциаций микроорганизмов. В холодный период года регистрировались более высокие значения микробной обсемененности в учебных помещениях в сравнении с теплым периодом года. Выявлено уменьшение микробной обсемененности воздуха в конце занятий при работе устройства в течение 30 минут в режиме общеобменной вентиляции на 0–38 %; при работе устройства с действующим веществом – на 80–99 %.
Заключение. Способ снижения микробной обсемененности воздуха учебных помещений с использованием пленочного абсорбера оригинальной конструкции показал высокую эффективность.
При поддержке: Статья подготовлена при финансовой поддержке гранта в рамках соглашения № 3 от 20. 12. 2021 между Комитетом экономической политики и развития Волгоградской области, руководителем проекта Н. И. Латышевской и организацией (ООО «ЦМИТ БИОПЕЧАТЬ»)
Для цитирования:
Шкарин В.В., Латышевская Н.И., Замараев В.С., Давыденко Л.А., Беляева А.В., Засядкина А.В., Тарабанов В.М. Оценка эффективности инновационного способа снижения микробной обсемененности воздуха учебных помещений (сообщение 1). Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2022;(7):33-39. https://doi.org/10.35627/2219-5238/2022-30-7-33-39
For citation:
Shkarin V.V., Latyshevskaya N.I., Zamaraev V.S., Davydenko L.A., Belyaeva A.V., Zasyadkina A.V., Tarabanov V.M. Evaluation of Efficiency of an Innovative Method for Reducing Microbial Air Contamination in Auditoriums: Part 1. Public Health and Life Environment – PH&LE. 2022;(7):33-39. (In Russ.) https://doi.org/10.35627/2219-5238/2022-30-7-33-39
Введение. Санитарно-гигиеническое благополучие воздушной среды закрытых помещений различного предназначения – важнейшее направление профилактики распространения инфекций с аэрозольным механизмом передачи возбудителя [1]. Большое количество гигиенических исследований посвящено проблеме циркуляции микроорганизмов в стационарах различного профиля, оценке фактической контаминации воздуха различных помещений медицинских организаций микроорганизмами, анализу риска развития инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи [2–8]. В последние годы появился ряд работ, посвященных изучению видового состава микробиоты общественного транспорта [9–13].
В то же время в связи с ухудшающейся эпидемиологической ситуацией в мире особую значимость приобретает обеспечение микробиологической безопасности воздушной среды при пребывании в закрытых помещениях и близких контактах различных контингентов населения. Особому риску для здоровья подвергаются обучающиеся в различных образовательных организациях (школьники, студенты, дети, занимающиеся в различных секциях и кружках) в связи с длительным пребыванием в закрытых помещениях. С состоянием воздушной среды, характером ее микрофлоры связана заболеваемость обучающихся острыми респираторными инфекциями. Респираторная инфекция способствует формированию у детей и подростков очагов хронического воспаления, развитию аллергических заболеваний, обострению латентных очагов инфекции [14–18]. Улучшение качества воздушной среды в классных комнатах, лекционных аудиториях, лабораториях по гигиеническим и микробиологическим показателям является важнейшей составляющей в системе мероприятий по профилактике респираторно-вирусных заболеваний школьников и студентов. В то же время работы, посвященные микробиологическому мониторингу воздуха учебных помещений с последующей разработкой методов профилактики воздушно-капельных инфекций, единичны [19–21]. Так, в работе Абдулиной Г.А. и соавт. [20] установлено, что микрофлора учебных комнат наиболее агрессивна в количественном и качественном отношении в холодный период года. Например, общее микробное число, количество стафилококков, гемолитических стрептококков (КОЕ/м3) в два и более раз выше зимой в сравнении с аналогичным показателем в летний период времени. При этом авторы отметили, что использование ультрафиолетового бактерицидного рециркулятора «АЕРЕХ constant» для улучшения микробиологических показателей учебной комнаты не дало ожидаемой и рекламируемой эффективности. В работе Горбатковой Е.Ю. [21] установлено, что в 16,8 % аудиторий (от всех исследуемых) определено наличие плесневых грибов (от 10 до 50 КОЕ/л). Также в 6,3 % учебных комнат выявлен золотистый стафилококк (от 4 до 8 колониеобразующих единиц), являющийся представителем патогенной микрофлоры и вызывающий гнойно-септические заболевания. Определено высокое содержание бактерий различного вида: Bacillus altitudinis, Bacillus simplex, Bacillus cereus, Bacillus horneckiae, являющихся спорообразующими почвенными бациллами.
В связи вышеизложенным понятно, что технологии, позволяющие быстро и эффективно уничтожать микроорганизмы в воздухе, востребованы не только в медицине, но и в других областях жизнедеятельности человека, в том числе в помещениях образовательных организаций. При этом практически все известные методы и подходы улучшения качества воздушной среды закрытых помещений по биологическому фактору направлены на уничтожение микроорганизмов, уже содержащихся в воздухе [22–24]. Например, метод аэрозольной дезинфекции, основанный на преобразовании дезинфицирующего средства в мелкодисперсное состояние с помощью специальной распыляющей аппаратуры и введения аэрозоля в воздушную среду помещения [23]. Распространенным способом очистки приточного воздуха является применение фильтров различных классов очистки (в зависимости от назначения помещения и требований к чистоте воздуха в них). В основе метода фильтрации лежит принцип предотвращения поступления в помещение твердых аэрозольных частиц (в том числе микроорганизмов) путем их задержки на высокоэффективных фильтрах – НЕРА-фильтрах, технология которых направлена не на уничтожение микроорганизмов, а только на ограничение их поступления в помещение. При этом не исключается накопление живых микроорганизмов на фильтрующей части, приводящий впоследствии к их «залповому выбросу» в воздух помещения. Представляется актуальной разработка и внедрение инновационных технологий, позволяющих улучшить качество воздушной среды как за счет ограничения поступления живых микроорганизмов в воздух закрытых помещений, так и их инактивации.
Цель исследования: оценка эффективности инновационного способа снижения микробной обсемененности воздушной среды учебных помещений с использованием пленочного абсорбера оригинальной конструкции.
Материалы и методы. Реализация поставленной цели предполагала оценку параметров микроклимата и динамики микробной обсемененности воздуха учебных помещений при различных режимах работы устройства (без присутствия людей). Исследование проводилось на базе Волгоградского государственного медицинского университета. Было обследовано 8 аудиторий. Произведено 72 замера (прибор testo-400, термогигрометр ТКАТВ) параметров микроклимата (температура, результирующая температура, относительная влажность, скорость движения воздуха) в соответствии с требованиями МУК 4.3.2756–101 и СанПиН 1.2.3685–212.
В данной работе (сообщение 1) для обеззараживания воздуха представлен вариант конструкции с активным веществом – хлоридом лития (устройство кондиционирования воздуха – пленочный абсорбер оригинальной конструкции – защищено патентом РФ на полезную модель № 199446). Конструкция устройства позволяет получить развитую поверхность контакта воздуха с раствором хлористого лития (коэффициент эффективности тепло-массообмена составляет 0,9), а также исключить попадание раствора в помещение вследствие отсутствия процесса распыливания жидкости в аппарате. Известно, что хлорид лития согласно данным литературы (справочник Н.В. Лазарева, 1977)3 может применяться для кондиционирования воздуха, но без уточнения для производственных или жилых помещений.
В соответствии с СанПиН 1.2.3685–21 ориентировочный безопасный уровень воздействия (ОБУВ) в атмосферном воздухе городских и сельских поселений лития хлорида (в пересчете на литий) составляет 0,02 мг/м3. В связи с вышеизложенным во втором сообщении предполагается представить результаты оценки безопасности работы устройства (исходя из токсикологической характеристики вещества), подтверждающих отсутствие миграции хлорида лития в воздухе помещения. Разработанный инновационный способ снижения микробной обсемененности воздуха закрытых помещений защищен патентом на изобретение (заявка № 2021117492/04(036899))4.
Изучение микробной обсемененности воздушной среды (МОВС) осуществлялось в соответствии с существующими в РФ нормативами, регламентирующими микробиологическую безопасность воздушной среды в лечебных учреждениях: СП 2.1.3678–205 и МУК 4.2.2942–116. Исследования проводили в холодный и теплый периоды года в помещениях с учетом показателя удельной площади помещения на одного обучающегося. МОВС определяли до начала учебных занятий, сразу после их окончания и после использования пленочного абсорбера. По мнению Беловой И.В. и соавт., выделение микроорганизмов культуральным методом позволяет судить не только о видовом разнообразии микробиоценоза, но и о количественной представленности каждого вида [13][24]. Определялись следующие показатели, выраженные в КОЕ/м3: общая микробная обсемененность, количество стафилококков, плесневых и дрожжевых грибов, количество гемолитических микроорганизмов.
Пробы воздуха отбирали аспирационным методом с использованием сертифицированного аспиратора ПУ-1Б, используя для посева в каждой серии опытов по три чашки с мясопептонным агаром (МПА), желточно-солевым агаром (ЖСА), средой Сабуро и кровяным агаром. Оптимальные объемы аспирируемого воздуха были подобраны в предварительных опытах. Через двое суток культивирования посевов при 37 °C проводился подсчет колоний. Каждая серия опытов в идентичных условиях проводилась не менее трех раз при трех режимах работы устройства; 0,5, 1,0 и 1,5 часа. Обработка результатов осуществлялась с использованием пакета программ Microsoft Excel. Достоверность результатов рассчитывалась с применением критерия χ2 (p < 0,05).
Результаты исследования. Оценка параметров микроклимата показала, что в холодный период года все показатели соответствовали гигиеническим нормам (табл. 1). В теплый период года температура воздуха колебалась в диапазоне 25,6–27,8 °C, результирующая превышала допустимые величины.
Исследование сезонных колебаний МОВС показало рост практически всех исследуемых показателей в холодный период года. Полученные данные согласуются с результатами группы авторов [20], которые выявили, что микрофлора учебных комнат наиболее агрессивна в холодный период года. Наряду с повышением общей микробной обсемененности наблюдалось существенное увеличение концентрации стафилококков и гемолитической флоры, особенно после проведения в помещениях занятий с обучающимися (рис. 1, 2). В исследовании Горбатковой Е.Ю. [21] в учебных комнатах выявлен золотистый стафилококк, являющийся представителем патогенной микрофлоры, вызывающий гнойно-септические заболевания.
Существенное влияние на показатели МОВС после проведения занятий оказывало количество студентов в учебном помещении (рис. 3).
Дальнейшие исследовании по оценке эффективности инновационного способа снижения микробной обсемененности воздуха учебных помещений проводили в холодный период после проведения в учебном помещении занятий с удельной площадью 2,8 м2 на одного студента, таким образом выбрана модель исследования с наиболее жесткими условиями.
Предварительно определены показатели МОВС при работе устройства без добавления активного вещества. На рис. 4 представлено сравнение показателей микробной обсемененности воздуха по окончании занятий в учебных комнатах и после работы устройства в течение 30 минут в режиме общеобменной вентиляции; их снижение не носило достоверный характер.
В режиме работы устройства с добавлением активного вещества в течение 30 минут показатели МОВС снижались более чем в 10 раз, что свидетельствует об эффективности предлагаемого инновационного способа снижения микробной обсемененности воздушной среды (рис. 5, табл. 2).
Далее выполнена оценка МОВС при работе устройства в течение одного и полутора часов. Показано, что увеличение времени работы устройства не оказывало существенного влияния на изучаемые показатели, что позволило сделать вывод о достаточной эффективности инновационного способа снижения микробной обсемененности воздушной среды учебных помещений с использованием пленочного абсорбера оригинальной конструкции в режиме работы «0,5 часа».
Таблица 1. Параметры микроклимата учебных помещений
Table 1. Microclimate parameters registered in auditoriums
Рис. 1. Показатели сезонной изменчивости микробной обсемененности воздушной среды в учебных помещениях до начала занятий (1 – мясопептонный агар; 2 – желточно-солевой агар; 3 – среда Сабуро; 4 – плесневые грибы на среде Сабуро; 5 – кровяной агар; 6 – гемолитические колонии на кровяном агаре)
Fig. 1. Indicators of seasonal variability of microbial contamination of indoor air (MCIA) in university auditoriums before classes (1 – beef extract agar; 2 – salt egg yolk agar; 3 – Sabouraud agar; 4 – mold on Sabouraud agar; 5 – blood agar; 6 – hemolytic bacterial colonies on blood agar)
Рис. 2. Показатели сезонной изменчивости микробной обсемененности воздушной среды в учебных помещениях после занятий (1 – мясопептонный агар; 2 – желточно-солевой агар; 3 – среда Сабуро; 4 – плесневые грибы на среде Сабуро; 5 – кровяной агар; 6 – гемолитические колонии на кровяном агаре)
Fig. 2. Indicators of seasonal variability of microbial contamination of indoor air (MCIA) in university auditoriums after classes (1 – beef extract agar; 2 – salt egg yolk agar; 3 – Sabouraud agar; 4 – mold on Sabouraud agar; 5 – blood agar; 6 – hemolytic bacterial colonies on blood agar)
Рис. 3. Показатели микробной обсемененности воздушной среды с учетом удельной площади учебного помещения на одного обучающегося (1 – мясопептонный агар; 2 – желточно-солевой агар; 3 – среда Сабуро; 4 – плесневые грибы на среде Сабуро; 5 – кровяной агар; 6 – гемолитические колонии на кровяном агаре)
Fig. 3. Indicators of microbial contamination of indoor air (MCIA) depending on the auditorium area per student (1 – beef extract agar; 2 – salt egg yolk agar; 3 – Sabouraud agar; 4 – mold on Sabouraud agar; 5 – blood agar; 6 – hemolytic bacterial colonies on blood agar)
Рис. 4. Динамика показателей микробной обсемененности воздуха при работе устройства в режиме вентиляции в течение 30 минут (1 – мясопептонный агар; 2 – желточно-солевой агар; 3 – среда Сабуро; 4 – плесневые грибы на среде Сабуро; 5 – кровяной агар; 6 – гемолитические колонии на кровяном агаре)
Fig. 4. Changes in the level of microbial contamination of indoor air (MCIA) after 30-minute operation of the device in the ventilation mode (1 – beef extract agar; 2 – salt egg yolk agar; 3 – Sabouraud agar; 4 – mold on Sabouraud agar; 5 – blood agar; 6 – hemolytic bacterial colonies on blood agar)
Рис. 5. Динамика показателей микробной обсемененности воздуха при работе устройства с действующим веществом в течение 30 минут (1 – мясопептонный агар; 2 – желточно-солевой агар; 3 – среда Сабуро; 4 – плесневые грибы на среде Сабуро; 5 – кровяной агар; 6 – гемолитические колонии на кровяном агаре)
Fig. 5. Changes in level of microbial contamination of indoor air (MCIA) after 30-minute operation of the device with the active substance added (1 – beef extract agar; 2 – salt egg yolk agar; 3 – Sabouraud agar; 4 – mold on Sabouraud agar; 5 – blood agar; 6 – hemolytic bacterial colonies on blood agar)
Таблица 2. Сравнительный анализ динамики микробной обсемененности воздуха, %
Table 2. Comparative analysis of the dynamics of microbial air contamination, %
Заключение. Изучена и оценена МОВС учебных комнат; в большинстве проб выявлены 2–4-компонентные ассоциации микроорганизмов. В состав ассоциаций входили бактерии и грибы III и IV группы патогенности. Анализ полученных данных показал, что фактическая контаминация воздуха учебных помещений в холодный период года достоверно отличается от таковой в теплый период года уже в начале учебного дня. Показатели микробной обсемененности воздуха в учебных помещениях после проведения занятий (через 4 часа) достоверно выше; возрастание наиболее значимо в холодный период года. Осуществленная оценка инновационного способа снижения микробной обсемененности воздуха учебных помещений с использованием пленочного абсорбера оригинальной конструкции показала высокую степень его эффективности. Уже через 0,5 часа его работы показатели МОВС снижались более чем в 10 раз, что определяет незначительные эксплуатационные расходы устройства. На разработанный инновационный способ снижения микробной обсемененности воздуха закрытых помещений (заявка № 2021117492/04(036899)) получено решение о выдаче патента на изобретение. В настоящее время ведется продолжение исследования в двух направлениях: 1) изучение безопасности работы устройства, подтверждение отсутствия миграции хлорида лития в воздух помещения; 2) апробация работы устройства и оценка эффективности способа обеззараживания воздуха с другими активными веществами, например хлоридом магния. Результаты будут представлены в сообщении 2.
1. МУК 4.3.2756–10 «Методические указания по измерению и оценке микроклимата производственных помещений».
2. СанПиН 1.2.3685–21 «Гигиенические нормативы и требования к обеспечению безопасности и (или) безвредности для человека факторов среды обитания».
3. Вредные вещества в промышленности: Неорганические и элементорганические соединения : справ. для химиков, инженеров и врачей: в 3-х т. / под общ. ред. засл. деят. науки, проф. Н.В. Лазарева. Л.: Химия, Ленингр. отд-ние, 1977. 608 с.
4. Латышевская Н.И., Апухтин А.Ф., Замараев В.С. Способ очистки воздуха от патогенной микрофлоры путем кондиционирования через сменяемые поглощающие фильтры. Патент РФ на изобретение № 2775086. 16.06.2021. Доступно по: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=49199938. Ссылка активна на 02 августа 2022 г.
5. СП 2.1.3678–20 «Санитарно-эпидемиологические требования к эксплуатации помещений, зданий, сооружений, оборудования и транспорта, а также условиям деятельности хозяйствующих субъектов, осуществляющих продажу товаров, выполнение работ или оказание услуг».
6. МУК 4.2.2942–11 «Методы санитарно-бактериологических исследований объектов окружающей среды, воздуха и контроля стерильности в лечебных организациях».
Список литературы
1. Noakes C. J., Beggs C. B., Sleigh P. A., Kerr K. G. Modelling the transmission of airborne infections in enclosed spaces. Epidemiol Infect. 2006; 134 (5): 1082-1091. doi: 10.1017/S0950268806005875
2. Габриэлян Н. И. Внешняя среда хирургической клиники и внутрибольничные инфекции (состояние вопроса) / Н. И. Габриэлян [и др.] // Медицинский алфавит. – 2015. – Т. 1. – № 6. – С. 7–12.
3. Зарипова А. З. Региональные особенности заболеваемости инфекциями, связанными с оказанием медицинской помощи / А. З. Зарипова [и др.] // Практическая медицина. – 2016. – № 5 (97). – С. 7–11.
4. Бадамшина Г. Г. Анализ риска развития инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи / Г. Г. Бадамшина [и др.] // Анализ риска здоровью. – 2017. – № 2. – С. 113–118. doi: 10.21668/health.risk/2017.2.12
5. Беляева Е. В. Исследование циркуляции S. Epidermidis и S. Haemolyticus в детском стационаре / Е. В. Беляева [и др.] // Здоровье населения и среда обитания. – 2021. – № 4 (337). – С. 18–24. doi:10.35627/2219-5238/2021-337-4-18-24
6. Бадамшина Г. Г. Актуальные вопросы оценки условий труда медицинских работников по уровню биологического фактора / Г. Г. Бадамшина, В. Б. Зиатдинов, Л. М. Фатхутдинова // Медицина труда и промышленная экология. – 2019. – Т. 59. – № 9. – С. 551–551. doi: 10.31089/1026-9428-2019-59-9-551-552
7. Шайхразиева Н. Д. Этиологическая структура и антибиотикорезистентность нозокомиальных штаммов микроорганизмов в отделении анестезиологии и реанимации / Н. Д. Шайхразиева [и др.] // Медицинский альманах. – 2019. – № 1 (58). – С. 32–34. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/etiologicheskaya-struktura-i-antibiotikorezistentnost-gospitalnyh-shtammov-mikroorganizmov-v-otdelenii-anesteziologii-i-reanimatsii
8. Abdollahi A, Mahmoudzadeh S. Microbial profile of air contamination in hospital wards. Iran J Pathol. 2012; 7 (3): 177–182. Accessed July 28, 2022. https://ijp.iranpath.org/article_8355.html
9. Afshinnekoo E., Meydan C., Chowdhury S., et al. Geospatial resolution of human and bacterial diversity with city-scale metagenomics. Cell Syst. 2015; 1 (1): 72-87. doi: 10.1016/j.cels.2015.01.001
10. MetaSUB International Consortium. The Metagenomics and Metadesign of the Subways and Urban Biomes (MetaSUB) International Consortium inaugural meeting report. Microbiome. 2016; 4 (1): 24. doi: 10.1186/s40168-016-0168-z
11. Тихонов В. В. Оценка численности микроорганизмов в воздухе общественного транспорта Москвы в зимний период / В. В. Тихонов, О. В. Николаева, П. А. Пильгун // Городские исследования и практики. – 2018. – Т. 3. – № 3 (12). – С. 36–47. doi: 10.17323/usp33201836-47
12. Бирюков М. В. Оценка микроклимата и бактериальной флоры в летнее время года в общественном транспорте / М. В. Бирюков, В. В. Черницына // Актуальные проблемы экспериментальной и клинической медицины: Мат. 78-й международной научно-практической конференции молодых ученых и студентов. – 2020. – С. 173
13. Белова И. В. Видовой состав микробиоты автобусов внутригородских маршрутов / И. В. Белова [и др.] // Здоровье населения и среда обитания. – 2021. – № 4 (337). – С. 10–17. doi: 10.35627/2219-5238/2021-337-4-10-17
14. Гервазиева В. Б. Роль респираторных вирусов в развитии аллергии / ВА. Б. Гервазиева [и др.] // Цитокины и воспаление. – 2003. – Т. 2. – № 3. – С. 1–8.
15. Германенко И. Г. Эпидемиологические особенности аденовирусной инфекции у детей / И. Г. Германенко ; Министерство здравоохранения Республики Беларусь, Республиканский научно-практический центр эпидемиологии и микробиологии // Современные проблемы инфекционной патологии человека : Сборник научных трудов, Минск, 25–26 октября 2012 года. – Минск: Государственное учреждение «Республиканский научно-практический центр эпидемиологии и микробиологии». – 2012. – C. 21–24.
16. Исаева Г. Ш. Гигиенический и микробиологический мониторинг воздушной среды в начальной школе / Г. Ш. Исаева, В. Б. Зиатдинов, С. Н. Габидуллина // Здравоохранение Российской Федерации. – 2016. – Т. 60. – № 2. – С. 83—88. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/gigienicheskiy-i-mikrobiologicheskiy-monitoring-vozdushnoy-sredy-v-nachalnoy-shkole
17. Салтыкова Т. С. Эпидемиологическая характеристика острых респираторных вирусных инфекций и гриппа на территории Российской Федерации и г. Москвы / Т. С. Салтыкова [и др.] // Журнал инфектологии. – 2019. – Т. 11. – № 2. – С. 124–132. doi: 10.22625/2072-6732-2019-11-2-124-132
18. Le Cann P., Bonvallot N., Glorennec P., Deguen S., Goeury C., Le Bot B. Indoor environment and children’s health: recent developments in chemical, biological, physical and social aspects. Int J Hyg Environ Health. 2011; 215 (1): 1-18. doi: 10.1016/j.ijheh.2011.07.008
19. Badri R. M., Alani R. R., Hassan S. S. Identification and characterization of air bacteria from some school of Baghdad city. Mesop Environ J. 2016; 2 (4): 9–13. Accessed July 28, 2022. https://www.iasj.net/iasj/down-load/4459b557baf9282e
20. Абдулина Г. А. Микробиологический мониторинг воздуха учебных помещений – основа профилактики воздушно-капельных инфекций среди учащихся / Г. А. Абдулина [и др.] // Вестник Карагандинского университета. Серия «Биология. Медицина. География». – 2018. – Т. 89. – № 1. – С. 20–27.
21. Горбаткова Е. Ю. Гигиеническая оценка условий обучения (на примере высших учебных заведений Уфы) / Е. Ю. Горбаткова // Гигиена и санитария. – 2020. – Т. 99. – № 4. – С. 405–411. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/gigienicheskaya-otsenka-usloviy-obucheniya-na-primere-vysshih-uchebnyh-zavedeniy-ufy
22. Наголкин А. В. Инновационное решение обеспечения биобезопасности воздушной среды с помощью российской технологии обеззараживания воздуха «Поток» / А. В. Наголкин, М. Ф. Загидуллов, Д. И. Донецкая // Инновации. – 2015. – № 12 (206). – С. 106–110.
23. Шестопалов Н. В. Совершенствование методических подходов к управлению риском распространения инфекций с аэрозольным механизмом передачи возбудителя / Н. В. Шестопалов [и др.] // Анализ риска здоровью. – 2019. – № 1. – С. 84–90.
24. Пунченко О. Е. Исследование микробиоты воздуха в многопрофильном стационаре Санкт-Петербурга / О. Е. Пунченко, К. Г. Косякова, Н. В. Васильева // Гигиена и санитария. – 2014. – Т. 93. – № 5. – С. 33–36.
Об авторах
В. В. Шкарин
Минздрав России; ООО «Центр молодежного инновационного творчества “Биопечать”»
Россия
Россия
Владимир Вячеславович Шкарин, д. м. н., доцент, заведующий кафедрой, исполнитель в рамках соглашения № 3 от 20. 12. 2021 между Комитетом экономической политики и развития Волгоградской области, руководителем проекта и организацией ООО «ЦМИТ БИОПЕЧАТЬ»
ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет»
Институт НМФО ФГБОУ
кафедра общественного здоровья и здравоохранения
400131
пл. Павших Борцов, д. 1
400005
пр. им. В. И. Ленина, д. 58/1, кв. 50
Волгоград
Н. И. Латышевская
Минздрав России; ООО «Центр молодежного инновационного творчества “Биопечать”»
Россия
Россия
Наталья Ивановна Латышевская, д. м. н., профессор, заведующая кафедрой, руководитель в рамках соглашения № 3 от 20. 12. 2021 между Комитетом экономической политики и развития Волгоградской области, руководителем проекта и организацией ООО «ЦМИТ БИОПЕЧАТЬ»
ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет»
кафедра общей гигиены и экологии
400131
пл. Павших Борцов, д. 1
400005
пр. им. В. И. Ленина, д. 58/1, кв. 50
Волгоград
В. С. Замараев
Минздрав России; ООО «Центр молодежного инновационного творчества “Биопечать”»
Россия
Россия
Валерий Семенович Замараев, д. м. н., профессор, профессор кафедры, исполнитель в рамках соглашения № 3 от 20. 12. 2021 между Комитетом экономической политики и развития Волгоградской области, руководителем проекта и организацией ООО «ЦМИТ БИОПЕЧАТЬ»
ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет»
кафедра микробиологии, вирусологии, иммунологии с курсом клинической микробиологии
400131
пл. Павших Борцов, д. 1
400005
пр. им. В. И. Ленина, д. 58/1, кв. 50
Волгоград
Л. А. Давыденко
Минздрав России; ООО «Центр молодежного инновационного творчества “Биопечать”»
Россия
Россия
Людмила Александровна Давыденко, д. м. н., профессор, профессор кафедры, исполнитель в рамках соглашения № 3 от 20. 12. 2021 между Комитетом экономической политики и развития Волгоградской области, руководителем проекта и организацией ООО «ЦМИТ БИОПЕЧАТЬ»
ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет»
кафедра общей гигиены и экологии
400131
пл. Павших Борцов, д. 1
400005
пр. им. В. И. Ленина, д. 58/1, кв. 50
Волгоград
А. В. Беляева
Минздрав России; ООО «Центр молодежного инновационного творчества “Биопечать”»
Россия
Россия
Алина Васильевна Беляева, к. б. н., доцент, исполнитель в рамках соглашения № 3 от 20. 12. 2021 между Комитетом экономической политики и развития Волгоградской области, руководителем проекта и организацией ООО «ЦМИТ БИОПЕЧАТЬ»
ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет»
кафедра общей гигиены и экологии
400131
пл. Павших Борцов, д. 1
400005
пр. им. В. И. Ленина, д. 58/1, кв. 50
Волгоград
А. В. Засядкина
Минздрав России; ООО «Центр молодежного инновационного творчества “Биопечать”»
Россия
Россия
Анна Владимировна Засядкина, ассистент, исполнитель в рамках соглашения № 3 от 20. 12. 2021 между Комитетом экономической политики и развития Волгоградской области, руководителем проекта и организацией ООО «ЦМИТ БИОПЕЧАТЬ»
ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет»
кафедра микробиологии, вирусологии, иммунологии с курсом клинической микробиологии
400131
пл. Павших Борцов, д. 1
400005
пр. им. В. И. Ленина, д. 58/1, кв. 50
Волгоград
В. М. Тарабанов
ООО «Центр молодежного инновационного творчества “Биопечать”
Россия
Россия
Валерий Михайлович Тарабанов, исполнитель в рамках соглашения № 3 от 20. 12. 2021 между Комитетом экономической политики и развития Волгоградской области, руководителем проекта и организацией ООО «ЦМИТ БИОПЕЧАТЬ»
400005
пр. им. В. И. Ленина, д. 58/1, кв. 50
Волгоград
Дополнительные файлы
Рецензия
Для цитирования:
Шкарин В.В., Латышевская Н.И., Замараев В.С., Давыденко Л.А., Беляева А.В., Засядкина А.В., Тарабанов В.М. Оценка эффективности инновационного способа снижения микробной обсемененности воздуха учебных помещений (сообщение 1). Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2022;(7):33-39. https://doi.org/10.35627/2219-5238/2022-30-7-33-39
For citation:
Shkarin V.V., Latyshevskaya N.I., Zamaraev V.S., Davydenko L.A., Belyaeva A.V., Zasyadkina A.V., Tarabanov V.M. Evaluation of Efficiency of an Innovative Method for Reducing Microbial Air Contamination in Auditoriums: Part 1. Public Health and Life Environment – PH&LE. 2022;(7):33-39. (In Russ.) https://doi.org/10.35627/2219-5238/2022-30-7-33-39
Просмотров:
518
.png)
Послать статью по эл. почте 