<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">sredob</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Public Health and Life Environment – PH&amp;LE</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">2219-5238</issn><issn pub-type="epub">2619-0788</issn><publisher><publisher-name>ФБУЗ ФЦГиЭ Роспотребнадзора</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.35627/2219-5238/2022-30-6-66-71</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">sredob-1016</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>ЭПИДЕМИОЛОГИЯ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>EPIDEMIOLOGY</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Генетическое профилирование штаммов Salmonella enteritidis, выделенных на территории Ставропольского края в 2016–2019 гг.</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Genetic Profiling of Salmonella enteritidis Strains Isolated in the Stavropol Region in 2016–2019</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-1893-6195</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Чекрыгина</surname><given-names>Е. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Chekrygina</surname><given-names>E. V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Чекрыгина Елена Владимировна – ассистент кафедры микробиологии</p><p>ул. Мира, д. 310, г. Ставрополь, 355017</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Elena V. Chekrygina, Assistant, Department of Microbiology</p><p>310 Mira Street, 355017, Stavropol</p></bio><email xlink:type="simple">Chekrygina-e@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-8882-6477</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Васильева</surname><given-names>О. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Vasilyeva</surname><given-names>O. V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Васильева Оксана Васильевнa – к.м.н., заведующая лаборатории диагностики бактериальных инфекций</p><p>ул. Советская, д. 13–15, г. Ставрополь, 355035</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Oksana V. Vasilyeva, Cand. Sci. (Med.), Head of Bacterial Infection Diagnostic Laboratory</p><p>13–15 Sovetskaya Street, Stavropol, 355035</p></bio><email xlink:type="simple">ksusha.vasilieva@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-5554-5882</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Волынкина</surname><given-names>А. С.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Volynkina</surname><given-names>A. S.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Волынкина Анна Сергеевна – к.б.н., заведующая лабораторией диагностики вирусных инфекций</p><p>ул. Советская, д. 13–15, г. Ставрополь, 355035</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Anna S. Volynkina, Cand. Sci. (Biol.), Head of Viral Infection Diagnostic Laboratory</p><p>13–15 Sovetskaya Street, Stavropol, 355035</p></bio><email xlink:type="simple">volyn444@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-5651-4498</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Алехина</surname><given-names>Ю. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Alekhina</surname><given-names>Yu. A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Алехина Юлия Александровна – врач КЛД лаборатории диагностики бактериальных инфекций</p><p>ул. Советская, д. 13–15, г. Ставрополь, 355035</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Yulia A. Alekhina, doctor of clinical laboratory diagnostics, Bacterial Infection Diagnostic Laboratory</p><p>13–15 Sovetskaya Street, Stavropol, 355035</p></bio><email xlink:type="simple">stavnipchi@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-9362-3949</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Куличенко</surname><given-names>А. Н.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Kulichenko</surname><given-names>A. N.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Куличенко Александр Николаевич – д.м.н., профессор, директор</p><p>ул. Советская, д. 13–15, г. Ставрополь, 355035</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Alexandr N. Kulichenko, Dr. Sci. (Med.), Professor; Director</p><p>13–15 Sovetskaya Street, Stavropol, 355035</p></bio><email xlink:type="simple">stavnipchi@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>ФГБОУ ВО «Ставропольский государственный медицинский университет» Минздрава России</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Stavropol State Medical University</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-2"><aff xml:lang="ru"><institution>ФКУЗ «Ставропольский противочумный институт» Роспотребнадзора</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Stavropol Research Anti-Plague Institute</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2022</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>11</day><month>07</month><year>2022</year></pub-date><volume>0</volume><issue>6</issue><fpage>66</fpage><lpage>71</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Чекрыгина Е.В., Васильева О.В., Волынкина А.С., Алехина Ю.А., Куличенко А.Н., 2022</copyright-statement><copyright-year>2022</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Чекрыгина Е.В., Васильева О.В., Волынкина А.С., Алехина Ю.А., Куличенко А.Н.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Chekrygina E.V., Vasilyeva O.V., Volynkina A.S., Alekhina Y.A., Kulichenko A.N.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://zniso.fcgie.ru/jour/article/view/1016">https://zniso.fcgie.ru/jour/article/view/1016</self-uri><abstract><p>Введение. В Ставропольском крае наиболее частым этиологическим агентом сальмонеллезов у людей является S. enteritidis, что соответствует общемировой тенденции. В связи с этим определение серовара дает мало информации в ходе эпидемиологического расследования и обуславливает необходимость субвидового типирования изолятов S. enteritidis.Цель исследования: провести MLVA-типирование штаммов S. enteritidis, выделенных на территории Ставропольского края в 2016–2019 гг., проанализировать генетическую структуру популяции сальмонелл в регионе.Материалы и методы. Исследовано 122 штамма S. enteritidis, изолированных в 2016–2019 гг. из проб испражнений больных острыми кишечными инфекциями в Ставропольском крае (г. Ставрополь и регион Кавказских Минеральных Вод (КМВ)). MLVA-типирование осуществляли по 5 вариабельным локусам. Размер амплифицированных локусов определяли методом капиллярного электрофореза.Результаты. Исследуемые штаммы отличались высокой генетической гетерогенностью и относились к 25 MLVA-генотипам. На территории г. Ставрополя выявлены штаммы S. enteritidis принадлежащие к 24 MLVA-типам. Доминирующим геновариантом в г. Ставрополе являлся 3-10-5-4-1, к которому относилось 40 штаммов сальмонелл (44,4 %), выделенных в 2016–2019 гг. В отдельные годы возрастал удельный вес других геновариантов. В регионе КМВ были выделены штаммы, относящиеся к 7 MLVA-генотипам, большинство выделенных культур принадлежало к генотипу 3-10-5-4-1. В регионе КМВ ежегодно отмечалась смена доминирующего варианта S. enteritidis. Доминирующие на территории края MLVA-типы широко распространены в мире и обладают значительным эпидемическим потенциалом. Заключение. Получены новые данные о MLVA-генотипах S. enteritidis, встречающихся на территории Ставропольского края (г. Ставрополь и регион КМВ). Определены доминирующие в регионе геноварианты, отмечены различия в соотношении циркулирующих MLVA-генотипов S. enteritidis в 2016–2019 гг., это определяет необходимость молекулярно-генетического мониторинга для оценки динамических изменений генетической структуры популяции сальмонелл в режиме реального времени. Полученные в результате работы данные могут быть использованы при эпидемиологическом анализе возможных случаев (вспышек) сальмонеллеза для определения источника и путей распространения инфекции.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><p>Introduction: Salmonella enteritidis is the most common etiologic agent of salmonellosis in humans in the Stavropol Region, which is in line with the global trend. In this regard, the definition of a serovar provides little information in the course of an epidemiological investigation and necessitates subspecific typing of S. enteritidis isolates.Objective: MLVA typing of S. enteritidis strains isolated in the Stavropol Region in 2016–2019 and the analysis of the genetic structure of the local Salmonella population.Materials and methods: We studied 122 strains of S. enteritidis isolated in 2016–2019 from stool samples of patients with acute intestinal infections in the city of Stavropol and the Caucasian Mineral Waters (CMW) of the Stavropol Region. Multi Locus Variable Number Tandem Repeat (MLVA) typing was performed based on five variable loci. The size of amplified loci was determined by capillary electrophoresis.Results: The studied strains were distinguished by high genetic heterogeneity and belonged to 25 MLVA genotypes. S. enteritidis strains belonging to 24 MLVA types were identified on the territory of Stavropol. The dominant genetic variant in the city was 3-10-5-4-1, which included 40 Salmonella strains (44.4%) isolated in 2016–2019. In some years, the proportion of other genetic variants increased. In the CMW area, strains belonging to seven MLVA genotypes were isolated, most of which belonged to the profile 3-10-5-4-1, while a change in the dominant variant of S. Enteritidis was registered annually. Prevalent regional MLVA types are widespread in the world and have a significant epidemic potential.Conclusions: We obtained new data on S. enteritidis MLVA genotypes in the Stavropol Region, established dominant genetic variants, and noted differences in the ratio of circulating MLVA genotypes of S. enteritidis in 2016–2019. Our findings necessitate constant molecular genetic monitoring to assess real-time dynamic changes in the genetic structure of the Salmonella population. They can also be used in investigations of possible cases (outbreaks) of salmonellosis to determine their source and routes of transmission.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>генетическое профилирование</kwd><kwd>MLVA-типирование</kwd><kwd>S. enteritidis</kwd><kwd>геноварианты</kwd><kwd>Ставропольский край</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>genetic profiling</kwd><kwd>MLVA typing</kwd><kwd>S. enteritidis</kwd><kwd>genetic variants</kwd><kwd>Stavropol Region</kwd></kwd-group></article-meta></front><body><p>Введение. Занимающий одно из ведущих мест в структуре острых кишечных бактериальных инфекций сальмонеллез характеризуется сложностью этиологической структуры, полиморфизмом клинических проявлений и формированием бактерионосительства. В России, несмотря на тенденцию к снижению распространения, сальмонеллезы занимают третье место (после ротаи норовирусной инфекции) в структуре заболеваемости с фекально-оральным механизмом передачи возбудителя1.</p><p>Для Ставропольского края сальмонеллез остается значимой инфекционной патологией с высокими эпидемиологическими рисками формирования очагов с множественными случаями заболеваний. В 2019 году произошел двукратный рост заболеваемости по сравнению с 2016–2018 гг.</p><p>На территории Ставропольского края находятся Кавказские Минеральные Воды (КМВ) – группа курортов федерального значения, особо охраняемый эколого-курортный регион Российской Федерации. Интенсивное развитие туристической отрасли края существенно увеличивает угрозу возникновения эпидемических ситуаций в регионе, в т. ч. массовых вспышек ОКИ, и обуславливает необходимость совершенствования системы эпидемиологического надзора и внедрения эффективного алгоритма идентификации штаммов для расследования вспышек и отдельных случаев заболевания ОКИ.</p><p>В Ставропольском крае наиболее частым этиологическим агентом сальмонеллезов у людей является Salmonella enterica subsp. enterica serovar enteritidis (S. enteritidis), что соответствует общемировой тенденции [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. Этот серовар выделяется в 84,1 % всех диагностированных случаев сальмонеллеза в крае2. В связи с этим определение серовара дает мало информации в ходе эпидемиологического расследования и обуславливает необходимость субвидового типирования изолятов S. enteritidis.</p><p>В последние годы широкое практическое применение для субвидовой характеристики микроорганизмов получили методы молекулярно-генетического анализа, обладающие большей дифференцирующей способностью по сравнению с фенотипическими методами исследования.</p><p>Молекулярное типирование S. enteritidis наиболее часто проводят с использованием методов гель-электрофореза в пульсирующем поле (PFGE-типирование), мультилокусного анализа числа вариабельных тандемных повторов (Multi Locus Variable Number Tandem Repeat Analysis – MLVA) и полногеномного секвенирования (Whole Genome Sequencing – WGS) [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>]. Применяемый для определения подтипов сальмонелл метод PFGE трудоемок, требует наличия специализированного оборудования и обученного персонала, время выполнения анализа составляет около трех суток [<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>]. Метод WGS обладает наибольшей дискриминирующей способностью, однако является дорогостоящим, требует проведения сложного биоинформационного анализа и пока не подходит для рутинного субвидового типирования S. enteritidis [<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>].</p><p>MLVA-типирование основано на анализе локусов с вариабельным числом тандемных повторов (VNTR-variable number tandem repeats). VNTR-локусы являются важным маркером полиморфизма генов, используемых для типирования близкородственных штаммов. Метод MLVA является основным для типирования сальмонелл в странах Европы, что связано с быстротой выполнения анализа и высокой воспроизводимостью результатов [<xref ref-type="bibr" rid="cit6">6</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>]. Анализ MLVA-профилей штаммов позволяет идентифицировать клоны и дифференцировать штаммы при расследовании вспышек, эффективно устанавливать или исключать связь между отдельными случаями заболеваний [<xref ref-type="bibr" rid="cit8">8</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>]. В странах ЕС разработаны стандартные операционные процедуры по выполнению MLVA-типирования сероваров S. enteritidis и S. typhimurium [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>].</p><p>Для эффективного применения молекулярно-генетических методов при решении различных эпидемиологических задач необходимо накопление сведений об особенностях генотипов штаммов, циркулирующих в исследуемом регионе, а также информации о генетической гетерогенности возбудителя в мире. Молекулярное типирование штаммов S. enteritidis, выделенных на территории Ставропольского края, позволит получить новую информацию о генетической структуре популяции сальмонелл в регионе, сформировать базу данных для молекулярного анализа при эпидемиологическом расследовании случаев заболевания ОКИ.</p><p>Цель исследования: провести MLVA-типирование штаммов S. enteritidis, выделенных на территории Ставропольского края в 2016–2019 гг., проанализировать генетическую структуру популяции сальмонелл в регионе.</p><p>Материалы и методы.</p><p>В работе использованы 122 штамма S. enteritidis, изолированных в 2016–2019 гг. из проб испражнений больных острыми кишечными инфекциями в Ставропольском крае, в т. ч. в г. Ставрополе (90 штаммов) и регионе КМВ (32 штамма). Случаи ОКИ эпидемиологически не связаны между собой. В этот период отмечалась спорадическая заболеваемость ОКИ, очаги групповой заболеваемости ОКИ не зарегистрированы.</p><p>Видовую идентификацию проводили по ферментативной активности в отношении различных субстратов с использованием наборов реагентов для идентификации энтеробактерий ММТЕ1 и ММТЕ2 (НПО «Аллерген», г. Ставрополь). Определение антигенной структуры штаммов выполняли в реакции агглютинации с сыворотками диагностическими сальмонеллезными адсорбированными к О- и Н-антигенам сальмонелл «ПЕТСАЛ» (производства СПбНИИВС Россия).</p><p>Выделение бактериальной ДНК производили с помощью набора реагентов «ДНК-Сорб-В» (производства ФБУН «ЦНИИЭ» Роспотребнадзора, г. Москва, Россия). Полученные образцы ДНК использовали для амплификации фрагментов генома изучаемых штаммов S. enteritidis.</p><p>MLVA-типирование проводили в соответствии с протоколом, разработанным Hopkins K.L. [<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>]. Для амплификации VNTR-локусов использовали праймеры, указанные в статье Malorny B. [<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>] (табл. 1). Размер амплифицированных локусов определяли методом капиллярного электрофореза на секвенаторе Applied Biosystems 3500 (США). Точный размер различающихся по длине аллелей определяли секвенированием по Сэнгеру с использованием Big Dye Terminator v 3.1 Cycle Sequencing Kit (Applied Biosystems). Индивидуальный MLVA-генотип штамма был получен на основании числа тандемных повторов в локусах: SENTR7-SENTR5-SENTR6-SENTR4- SE3.</p><fig id="fig-1"><caption><p>Таблица 1. Последовательности праймеров для амплификации VNTR-локусов</p><p>Table 1. Primer sequences for amplification of VNTR loci</p></caption><graphic xlink:href="sredob-0-6-g001.png"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/sredob/2022/6/umSJmXBmkNXEETlsJmLwCFNjqqlLwn23QhPoAQh6.png</uri></graphic></fig><p>Результаты. Проведено MLVA-типирование 122 штаммов S. enteritidis, выделенных от больных ОКИ в Ставропольском крае с 2016 по 2019 г. Исследованные штаммы отличались высокой генетической гетерогенностью и относились к 25 MLVA-генотипам. Наибольшее количество разных аллельных вариантов (8) выявлено в локусе SENTR5. В локусе SENTR6 выявлено 6 разных аллелей, в SENTR4 – 4, в локусах SENTR7 и SE3 – по 2.</p><p>На территории г. Ставрополя выявлены штаммы S. enteritidis, принадлежащие к 24 MLVA-типам, 74,4 % штаммов, выделенных в г. Ставрополе за весь период наблюдений, относились к семи наиболее распространенным MLVA-генотипам (табл. 2). Также выявлены минорные геноварианты, доля которых составляла 1,1–2,2 % от общего количества исследованных изолятов (в совокупности 25,6 %).</p><p>Доминирующим геновариантом в г. Ставрополе являлся 3-10-5-4-1, к которому относилось 40 штаммов сальмонелл (44,4 %), выделенных в 2016–2019 гг. В отдельные годы возрастал удельный вес других геновариантов: 2-10-8-3-2, 3-10-5-3-1, 3-11-5-4-1, 3-10-5-3-1, 2-10-14-6-1, 2-12-8-3-2 и 3-18-5-4-1. Ежегодно с 2016 по 2019 г. на территории г. Ставрополя встречались штаммы S. enteritidis, принадлежащие к MLVAгенотипам 3-10-5-4-1 и 3-9-5-4-1. В 2016 г. выявлены 11 геновариантов сальмонелл, преобладали штаммы с MLVA-генотипами 3-10-5-4-1 (36,4 %) и 2-10- 8-3-2 (13,6 %). В 2017 г. исследованные культуры принадлежали к 14 геновариантам, доминирующими являлись MLVA-типы 3-10-5-4-1 (53,5 %) и 3-10-5-3-1 (11,6 %). В 2018 г. выявлено 7 геновариантов S. enteritidis, отмечались изменения в соотношении генетических типов сальмонелл, доминирующим вариантом являлся 2-10-8-3-2 (23,1 %), доля варианта 3-10-5-4-1 снизилась до 15,4 %, выявлены штаммы MLVA-типов 2-12-8- 3-2 и 3-18-5-4-1 (по 2 штамма, 15,4 %). В 2019 г. исследованные штаммы относились к 4 вариантам, преобладал 3-10-5-4-1 (58,3 %), доля варианта 3-11-5-4-1 возросла до 25,0 %.</p><p>В регионе КМВ в 2016–2019 гг. выявлены штаммы S. enteritidis, принадлежащие к 7 MLVA-типам, большинство культур относилось к МLVA-генотипу 3-10-5-4-1 (31,3 %). В 2016 г. в городах-курортах КМВ выделены культуры S. enteritidis, относящиеся к трем MLVA-типам, преобладали штаммы геноварианта 3-9-5-4-1 (50,0 %). В 2017 г. доминирующим вариантом являлся 3-10-5-4-1 (75,0 %). В 2019 г. выявлено шесть геновариантов сальмонелл, преобладали штаммы генотипа 3-10-5-3-1 (28,6 %) (табл. 3).</p><fig id="fig-2"><caption><p>Таблица 2. MLVA-генотипы S. enteritidis, выявленные в г. Ставрополе в 2016–2019 гг.</p><p>Table 2. MLVA genotype of S. enteritidis isolated in Stavropol in 2016–2019</p></caption><graphic xlink:href="sredob-0-6-g002.png"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/sredob/2022/6/we5G2RXMhOUVfCiDtji7n07ztuYrkVJl5v17ukf7.png</uri></graphic></fig><fig id="fig-3"><caption><p>Таблица 3. MLVA-генотипы S. enteritidis, выявленные в регионе КМВ в 2016–2019 гг.</p><p>Table 3. MLVA genotypes of S. enteritidis isolated in the Caucasian Mineral Waters in 2016–2019</p></caption><graphic xlink:href="sredob-0-6-g003.png"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/sredob/2022/6/BvazUYU2ORjdim12V2wHbrb5LAa1Zj2qPGBOSmjY.png</uri></graphic></fig><p>Обсуждение. Метод MLVA-типирования широко применяется для оценки генетической гетерогенности штаммов S. enteritidis в мире, в том числе для выявления эпидемических геновариантов сальмонелл, способных вызывать вспышки сальмонеллеза на территории нескольких государств, и отслеживания возникновения новых генетических вариантов. Для накопления, хранения и обмена результатами MLVA-типирования сальмонелл, выделенных в странах ЕС и других регионах, а также для принятия управленческих решений в области общественного здравоохранения был разработан модуль Enter-net на платформе The European Surveillance System (TESSy) [<xref ref-type="bibr" rid="cit14">14</xref>].</p><p>Ретроспективное генетическое типирование S. enteritidis в Европе позволило выявить эпидемические варианты сальмонелл, преобладающие на территории большинства европейских государств, а также многочисленные минорные варианты, вызывающие спорадические случаи заболевания сальмонеллезами. Так, штаммы S. enteritidis, относящиеся к MLVA-типам 3-10-5-4- 1, 3-11-5-4-1, 2-10-7-3-2, 3-9-5-4-1, доминировали в Португалии в период с 2012 по 2019 г. [<xref ref-type="bibr" rid="cit15">15</xref>], являлись наиболее часто выявляемыми вариантами в Бельгии в 2007–2012 гг. [<xref ref-type="bibr" rid="cit16">16</xref>], в Венгрии и Австрии в 2016–2017 гг.</p><p>В 2010 г. в ЕС были выявлены штаммы S. enteritidis, относящиеся к новым MLVA-типам: 2-10-6-3-2, 2-10-8-3-2 и 2-11-8-3-2, вызвавшие в 2016–2017 гг. вспышку сальмонеллеза, охватившую территорию большинства европейских стран [<xref ref-type="bibr" rid="cit17">17</xref>].</p><p>Отмечена корреляция между увеличением доли эпидемических MLVA-типов S. enteritidis в регионе и ростом числа случаев сальмонеллезов [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>].</p><p>Встречающиеся на территории края MLVAтипы (3-10-5-4-1, 3-9-5-4-1, 3-11-5-4-1 и 2-10-8- 3-2) широко распространены в мире, обладают значительным эпидемическим потенциалом. Менее распространенный геновариант 2-11-8-3-2, доля которого увеличилась в г. Ставрополе в 2018 г., вызвал рост заболеваемости S. enteritidis PT-8 в странах ЕС в 2017 г. [<xref ref-type="bibr" rid="cit18">18</xref>].</p><p>В Российской Федерации для проведения молекулярно-генетического мониторинга за циркуляцией штаммов S. enteritidis используются методы PFGE и MLVA [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>]. В 2011–2019 гг. при поведении субтипирования штаммов методом PFGE c помощью эндонуклеаз рестрикции XbaI BlnI в РФ выделены S. enteritidis, относящиеся к 102 PFGE-типам. Наиболее распространенным у человека являлся субтип JEG01/001/JECA26/001, доля которого составляла 44 % от всех клинических изолятов S. enteritidis в РФ. Отмечались существенные различия в разнообразии выделяемых PFGE-типов в отдельных регионах страны [<xref ref-type="bibr" rid="cit21">21</xref>].</p><p>В результате работы получены новые данные о MLVA-генотипах S. enteritidis, встречающихся на территории Ставропольского края (г. Ставрополь и регион КМВ). Большинство клинических изолятов S. enteritidis, выделенных в 2016–2019 гг. на территории г. Ставрополя и региона КМВ, принадлежали к MLVA-генотипу 3-10-5-4-1, их доля в г. Ставрополе составила 44,4 %, в регионе КМВ – 31,3 %. На территории г. Ставрополя отмечено доминирование данного варианта в 2016, 2017, 2019 гг., и только в 2018 г. превалирующим вариантом стал 2-10-8-3-2. В регионе КМВ ежегодно отмечалась смена доминирующего варианта, что может быть связано с высокой миграционной активностью населения и относительно небольшим количеством исследованных штаммов.</p><p>Ретроспективное исследованиe штаммов S. enteritidis, выделенных на территории Ставропольского края в 2016–2019 гг., показало, что большинство изученных штаммов сальмонелл (100 штаммов, 81,96 %) относятся к восьми наиболее распространенным генотипам. Количественное соотношение MLVA-типов S. enteritidis, изолированных на территории Ставропольского края, в целом схоже с соотношением PFGE-генотипов S. enteritidis, выявленных в РФ: к одному преобладающему MLVA-типу относятся 41 % штаммов, изолированных в Ставропольском крае. В России в последние годы также установлено превалирование одного PFGE-субтипа S. enteritidis [<xref ref-type="bibr" rid="cit21">21</xref>].</p><p>Регулярный мониторинг за возникновением новых геновариантов сальмонелл, способных обладать повышенной вирулентностью и быть причиной изменений в патогенезе заболевания, является неотъемлемой частью современного эпиднадзора за ОКИ. Он имеет большое значение для здравоохранения в плане прогнозирования возможных сценариев развития эпидситуации с целью профилактики заболеваемости ОКИ бактериальной этиологии.</p><p>Метод MLVA показал высокую разрешающую способность при субтипировании штаммов S. enteritidis [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>]. В то же время наличие космополитных штаммов может затруднять расследование вспышек, и в некоторых случаях необходимо выполнение WGS (whole genome sequencing).</p><p>Заключение. Таким образом, в результате проведенных исследований получены новые данные о MLVA-генотипах S. enteritidis, встречающихся на территории Ставропольского края (г. Ставрополь и регион КМВ). Определены доминирующие в регионе геноварианты, отмечены различия в соотношении циркулирующих MLVA-генотипов S. enteritidis в 2016–2019 гг. Это диктует необходимость постоянного молекулярно-генетического мониторинга для оценки динамических изменений генетической структуры популяции сальмонелл в режиме реального времени.</p><p>Применение метода MLVA-типирования штаммов позволит не только проводить анализ генетической структуры популяции сальмонелл, но и эффективно устанавливать или исключать связь между отдельными случаями заболеваний, прогнозировать развитие эпидемиологической ситуации на основании данных о соотношении геновариантов сальмонелл в регионе. Полученные в результате работы данные могут быть использованы при эпидемиологическом анализе возможных случаев (вспышек) сальмонеллеза для определения источника и путей распространения инфекции.</p><p>1. О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2019 году: государственный доклад. М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2020. 299 с. Доступно по: https://www.rospotrebnadzor.ru/upload/iblock/8e4/gosdoklad-za-2019_seb_ 29_05.pdf43 (дата доступа: 20.04.2022).
2. О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Ставропольском крае в 2019 году: государственный доклад. Ставрополь, 2019. 107 с. Доступно по: http://26.rospotrebnadzor.ru/doc/gd/Gosdoklad_2019.pdf (дата доступа: 20.04.2022).
</p></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hendriksen RS, Vieira AR, Karlsmose S, et al. Global monitoring of Salmonella serovar distribution from the World Health Organization Global Foodborne Infections Network Country Data Bank: results of quality assured laboratories from 2001 to 2007. Foodborne Pathog Dis. 2011;8(8):887-900. doi: 10.1089/fpd.2010.0787</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hendriksen RS, Vieira AR, Karlsmose S, et al. Global monitoring of Salmonella serovar distribution from the World Health Organization Global Foodborne Infections Network Country Data Bank: results of quality assured laboratories from 2001 to 2007. Foodborne Pathog Dis. 2011;8(8):887-900. doi: 10.1089/fpd.2010.0787</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ziebell K, Chui L, King R, Johnson S, Boerlin P, Johnson RP. Subtyping of Canadian isolates of Salmonella Enteritidis using Multiple Locus Variable Number Tandem Repeat Analysis (MLVA) alone and in combination with Pulsed-Field Gel Electrophoresis (PFGE) and phage typing. J Microbiol Methods. 2017;139:29-36. doi: 10.1016/j.mimet.2017.04.012</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ziebell K, Chui L, King R, Johnson S, Boerlin P, Johnson RP. Subtyping of Canadian isolates of Salmonella Enteritidis using Multiple Locus Variable Number Tandem Repeat Analysis (MLVA) alone and in combination with Pulsed-Field Gel Electrophoresis (PFGE) and phage typing. J Microbiol Methods. 2017;139:29-36. doi: 10.1016/j.mimet.2017.04.012</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Inns T, Ashton PM, Herrera-Leon S, et al. Prospective use of whole genome sequencing (WGS) detected a multi-country outbreak of Salmonella Enteritidis. Epidemiol Infect. 2017;145(2):289-298. doi: 10.1017/S0950268816001941</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Inns T, Ashton PM, Herrera-Leon S, et al. Prospective use of whole genome sequencing (WGS) detected a multi-country outbreak of Salmonella Enteritidis. Epidemiol Infect. 2017;145(2):289-298. doi: 10.1017/S0950268816001941</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wattiau P, Boland C, Bertrand S. Methodologies for Salmonella enterica subsp. enterica subtyping: gold standards and alternatives. Appl Environ Microbiol. 2011;77(22):7877-7885. doi: 10.1128/AEM.05527-11</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wattiau P, Boland C, Bertrand S. Methodologies for Salmonella enterica subsp. enterica subtyping: gold standards and alternatives. Appl Environ Microbiol. 2011;77(22):7877-7885. doi: 10.1128/AEM.05527-11</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">den Bakker HC, Allard MW, Bopp D, et al. Rapid whole-genome sequencing for surveillance of Salmonella Enterica serovar enteritidis. Emerg Infect Dis. 2014;20(8):1306-1314. doi: 10.3201/eid2008.131399</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">den Bakker HC, Allard MW, Bopp D, et al. Rapid whole-genome sequencing for surveillance of Salmonella Enterica serovar enteritidis. Emerg Infect Dis. 2014;20(8):1306-1314. doi: 10.3201/eid2008.131399</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ferrari RG, Panzenhagen PHN, Conte-Junior CA. Phenotypic and genotypic eligible methods for Salmonella Typhimurium source tracking. Front Microbiol. 2017;8:2587. doi: 10.3389/fmicb.2017.02587</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ferrari RG, Panzenhagen PHN, Conte-Junior CA. Phenotypic and genotypic eligible methods for Salmonella Typhimurium source tracking. Front Microbiol. 2017;8:2587. doi: 10.3389/fmicb.2017.02587</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lienemann T, Kyyhkynen A, Halkilahti J, Haukka K, Siitonen A. Characterization of Salmonella Typhimurium isolates from domestically acquired infections in Finland by phage typing, antimicrobial susceptibility testing, PFGE and MLVA. BMC Microbiol. 2015;15:131. doi: 10.1186/s12866-015-0467-8</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lienemann T, Kyyhkynen A, Halkilahti J, Haukka K, Siitonen A. Characterization of Salmonella Typhimurium isolates from domestically acquired infections in Finland by phage typing, antimicrobial susceptibility testing, PFGE and MLVA. BMC Microbiol. 2015;15:131. doi: 10.1186/s12866-015-0467-8</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Liu Y, Shi X, Li Y, et al. The evaluation and application of multilocus variable number tandem repeat analysis (MLVA) for the molecular epidemiological study of Salmonella enterica subsp. enterica serovar Enteritidis infection. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2016;15:4. doi: 10.1186/s12941-016-0119-3</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Liu Y, Shi X, Li Y, et al. The evaluation and application of multilocus variable number tandem repeat analysis (MLVA) for the molecular epidemiological study of Salmonella enterica subsp. enterica serovar Enteritidis infection. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2016;15:4. doi: 10.1186/s12941-016-0119-3</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Mughini-Gras L, Franz E, van Pelt W. New paradigms for Salmonella source attribution based on microbial subtyping. Food Microbiol. 2018;71:60-67. doi: 10.1016/j.fm.2017.03.002</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mughini-Gras L, Franz E, van Pelt W. New paradigms for Salmonella source attribution based on microbial subtyping. Food Microbiol. 2018;71:60-67. doi: 10.1016/j.fm.2017.03.002</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Muvhali M, Smith AM, Rakgantso AM, Keddy KH. Investigation of Salmonella Enteritidis outbreaks in South Africa using multi-locus variable-number tandem-repeats analysis, 2013–2015. BMC Infect Dis. 2017;17(1):661. doi: 10.1186/s12879-017-2751-8</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Muvhali M, Smith AM, Rakgantso AM, Keddy KH. Investigation of Salmonella Enteritidis outbreaks in South Africa using multi-locus variable-number tandem-repeats analysis, 2013–2015. BMC Infect Dis. 2017;17(1):661. doi: 10.1186/s12879-017-2751-8</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">European Centre for Disease Prevention and Control. ECDC Technical Document. Laboratory standard operating procedure for multiple-locus variable-number tandem repeat analysis of Salmonella enterica serotype Enteritidis. Stockholm: ECDC; 2016. doi: 10.2900/973540</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">European Centre for Disease Prevention and Control. ECDC Technical Document. Laboratory standard operating procedure for multiple-locus variable-number tandem repeat analysis of Salmonella enterica serotype Enteritidis. Stockholm: ECDC; 2016. doi: 10.2900/973540</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hopkins KL, Peters TM, de Pinna E, Wain J. Standardisation of multilocus variable-number tandem-repeat analysis (MLVA) for subtyping of Salmonella enterica serovar Enteritidis. Euro Surveill. 2011;16(32):19942.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hopkins KL, Peters TM, de Pinna E, Wain J. Standardisation of multilocus variable-number tandem-repeat analysis (MLVA) for subtyping of Salmonella enterica serovar Enteritidis. Euro Surveill. 2011;16(32):19942.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Malorny B, Junker E, Helmuth R. Multi-locus variable-number tandem repeat analysis for outbreak studies of Salmonella enterica serotype Enteritidis. BMC Microbiol. 2008;8:84. doi: 10.1186/1471-2180-8-84</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Malorny B, Junker E, Helmuth R. Multi-locus variable-number tandem repeat analysis for outbreak studies of Salmonella enterica serotype Enteritidis. BMC Microbiol. 2008;8:84. doi: 10.1186/1471-2180-8-84</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Peters T, Bertrand S, Björkman JT, et al. Multi-laboratory validation study of multilocus variable-number tandem repeat analysis (MLVA) for Salmonella enterica serovar Enteritidis, 2015. Euro Surveill. 2017;22(9):30477. doi: 10.2807/1560-7917.ES.2017.22.9.30477</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Peters T, Bertrand S, Björkman JT, et al. Multi-laboratory validation study of multilocus variable-number tandem repeat analysis (MLVA) for Salmonella enterica serovar Enteritidis, 2015. Euro Surveill. 2017;22(9):30477. doi: 10.2807/1560-7917.ES.2017.22.9.30477</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Silveira LS. Phenotypic and genotypic characterization of Salmonella spp. isolates in Portugal. Doctor of Biology thesis. NOVA University Lisbon; 2019. Accessed April, 25, 2022. http://hdl.handle.net/10362/91582</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Silveira LS. Phenotypic and genotypic characterization of Salmonella spp. isolates in Portugal. Doctor of Biology thesis. NOVA University Lisbon; 2019. Accessed April, 25, 2022. http://hdl.handle.net/10362/91582</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bertrand S, De Lamine de Bex G, Wildemauwe C, et al. Multi locus variable-number tandem repeat (MLVA) typing tools improved the surveillance of Salmonella enteritidis: a 6 years retrospective study. PLoS One. 2015;10(2):e0117950. doi: 10.1371/journal.pone.0117950</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bertrand S, De Lamine de Bex G, Wildemauwe C, et al. Multi locus variable-number tandem repeat (MLVA) typing tools improved the surveillance of Salmonella enteritidis: a 6 years retrospective study. PLoS One. 2015;10(2):e0117950. doi: 10.1371/journal.pone.0117950</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit17"><label>17</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">European Food Safety Authority, European Centre for Disease Prevention and Control Multi-country outbreak of Salmonella Enteritidis phage type 8, MLVA profile 2-9-7-3-2 and 2-9-6-3-2 infections. Technical report EFSA. EFSA Supporting Publications. 2017;14(3):1188E. doi: 10.2903/sp.efsa.2017.EN-1188</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">European Food Safety Authority, European Centre for Disease Prevention and Control Multi-country outbreak of Salmonella Enteritidis phage type 8, MLVA profile 2-9-7-3-2 and 2-9-6-3-2 infections. Technical report EFSA. EFSA Supporting Publications. 2017;14(3):1188E. doi: 10.2903/sp.efsa.2017.EN-1188</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit18"><label>18</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Usein CR, Oprea M, Ciontea AS, et al. A snapshot of the genetic diversity of Salmonella Enteritidis population involved in human infections in Romania taken in the European epidemiological context. Pathogens. 2021;10(11):1490. doi: 10.3390/pathogens10111490</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Usein CR, Oprea M, Ciontea AS, et al. A snapshot of the genetic diversity of Salmonella Enteritidis population involved in human infections in Romania taken in the European epidemiological context. Pathogens. 2021;10(11):1490. doi: 10.3390/pathogens10111490</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit19"><label>19</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Кулешов К.В., Браславская С.И., Подколзин А.Т. Разработка и апробация методики MLVA-анализа с целью субтипирования изолятов S. Enteritidis. Молекулярная диагностика – 2010, Москва, 24–26 ноября 2010 года / Под редакцией В.И. Покровского. Москва: Киселева Н.В. 2010. С. 350–353.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kuleshov KV, Braslavskaya SI, Podkolzin AT. [Development and approbation of the MLVA analysis technique for the purpose of S. Enteritidis isolate subtyping.] In: Molecular Diagnostics – 2010: Proceedings of the Seventh Russian Scientific and Practical Conference, Moscow, November 24–26, 2010. Pokrovsky VI, ed. Moscow: Kiseleva N.V. Publ.; 2010:350-353. (In Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit20"><label>20</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Кулешов К.В., Подколзин А.Т., Рожнова. С.Ш. Сравнительная оценка молекулярно-генетических методов типирования изолятов S. Enteritidis в очагах групповой заболеваемости. Молекулярная диагностика – 2010, Москва, 24–26 ноября 2010 года / Под редакцией В.И. Покровского. Москва: Киселева Н.В. 2010. С. 353–357.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kuleshov KV, Podkolzin AT, Rozhnova SSh. [Comparative evaluation of molecular genetic methods for typing S. Enteritidis isolates in foci of group morbidity.] In: Molecular Diagnostics – 2010: Proceedings of the Seventh Russian Scientific and Practical Conference, Moscow, November 24–26, 2010. Pokrovsky VI, ed. Moscow: Kiseleva N.V. Publ.; 2010:353-357. (In Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit21"><label>21</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Рожнова С.Ш., Кулешов К.В., Павлова А.С. и др. Гетерогенность изолятов нетифоидных сальмонелл из различных источников выделения в Российской Федерации в 2010–2019 гг. // Эпидемиология и инфекционные болезни. 2020. Т. 25. № 1. С. 26–34. doi: 10.17816/EID35184</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rozhnova SSh, Kuleshov KV, Pavlova AS, et al. Heterogeneity of Salmonella isolates obtained from various sources in Russia 2010–2019. Epidemiologiya i Infektsionnye Bolezni. 2020;25(1):26-34. (In Russ.) doi: 10.17816/EID35184</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
