Контактная информация

117105, Москва, Варшавское шоссе, 19А
ФБУЗ «Федеральный центр гигиены и эпидемиологии» Роспотребнадзора
Редакция «ЗНиСО».

Оригиналы документов предпочтительно направлять в организацию курьерской доставкой


Тел.: (495) 633-18-17 доб 240
Internet: zniso.fcgie.ru
E-mail: zniso@fcgie.ru


Лицензия Creative Commons
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons С указанием авторства-Некоммерческая 4.0 Всемирная.

№ 8 (317) Август 2019

Просмотров: 448

скачать dle 12.1

100 ЛЕТ БОЛЬШОГО ПУТИ. НИЖЕГОРОДСКИЙ НИИ ЭПИДЕМИОЛОГИИ И МИКРОБИОЛОГИИ ИМ. АКАДЕМИКА И.Н. БЛОХИНОЙ Е.И. Ефимов, Г.И. Григорьева, В.В. Королева, М.С. Снегирева

ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии
и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора,
ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород, 603950, Россия
Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной является одним из ведущих научных учреждений, ориентированных на получение новых знаний об актуальных и социально значимых инфекциях и на совершенствование способов и средств их диагностики, профилактики и лечения, и одним из старейших в стране: в 2019 году институт отмечает 100 лет со дня основания. За столь долгий период активной деятельности на благо здоровья населения страны институтом проделана огромная работа по борьбе с инфекциями, такими как бешенство, корь, коклюш, холера, различными кишечными, раневыми и другими заболеваниями, оказана помощь органам практического здравоохранения как путем непосредственного участия сотрудников в ликвидациях аварий, вспышек инфекционных заболеваний, так и путем внедрения научно-методических и информационно-методических разработок. На сегодняшний день в сферу научных интересов института входят вопросы эпидемиологии, диагностики и профилактики актуальных бактериальных и вирусных инфекций (вирусные гепатиты, ВИЧ/СПИД, энтеровирусные инфекции, ОКИ, ИСМП, НУГИ, ПВИ, оппортунистические, нейро-бронхолегочные инфекции, в том числе внебольничные пневмонии). Конструируются новые образцы пробиотических препаратов для корректировки микробиоценозов. Разработан и внедрен в практику работы органов и организаций Роспотребнадзора ПФО ГИС-проект «Электронный эпидемиологический атлас ПФО», начаты работы по созданию «Электронного эпидемиологического атласа России». Ведутся исследования по изучению эффективности и безопасности вакцинации. Проводятся работы по конструированию экспресс-тест-систем в формате белковых биочипов для выявления информативных показателей для иммунозависимой оценки риска различных заболеваний. Перешагнув 100-летний рубеж, институт по-прежнему востребован как центр научно-методического и научно-практического обеспечения эпидемиологического надзора Нижегородской области, Приволжского федерального округа и России в целом, и успешно выполняет свою благородную и нужную работу, способствуя защите населения от инфекционных болезней
Ключевые слова: Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной, 100 лет.
Для цитирования: Ефимов Е.И., Григорьева Г.И., Королева В.В., Снегирева М.С. 100 лет большого пути. Нижегородский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной // Здоровье населения и среда обитания. 2019. № 8 (317). С. 4–10. DOI: http://doi.org/10.35627/2219-5238/2019-317-8-4-10
ЛИТЕРАТУРА
1. Беляев Е.И. Работа санэпидслужбы в условиях чрезвычайных ситуаций (1988–1989 гг.) // Санитарно-эпидемиол. службе России – 75 лет. Ветераны вспоминают. Н. Новгород, 1997. С. 39–41.
2. Блохина И.Н. Основные этапы развития Горьковского НИИ эпидемиологии и микробиологии // Итог. конф. «Применение колибактерина для профилактики и лечения кишечных заболеваний и технология его производства». М., 1967. С. 13–22.
3. Война. Труд. Победа. Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени академика И.Н. Блохиной в годы Великой Отечественной войны (1941–1945) / Под редакцией Е.И. Ефимова. Н. Новгород, 2015. 225 с.
4. Греннаус Г.И. Научно-исследовательский институт эпидемиологии и гигиены // Культурное строительство Горьковской области 1917–1957. Горький, 1957. С. 119–122.
5. Григорьева Г.И., Бруснигина Н.Ф., Иванова Н.И., Черневская О.М. Идеал личности в науке. Взгляд за горизонт // Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2016. № 6. С. 76–78.
6. Григорьева Г.И., Леванова Г.Ф., Якимычева Е.А. Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора // Материалы Юб. Всеросс. НПК «Научное обеспечение противоэпидемической защиты населения, посвященную 90-летию Нижегородского научно-исследовательского института эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной», 15–17 июня, 2009 г. Н. Новгород, 2009. С. 16–19.
7. Дёгтева Г.К. Нижегородский НИИ эпидемиологии и микробиологии на рубеже веков // НК «Естественные факторы защиты в профилактике и лечении экологически обусловленных заболеваний». Н. Новгород, 2000. С. 16–29.
8. Думеш М.Г. Краткий обзор работ по кишечным инфекциям Горьковского института эпидемиологии и микробиологии // Сборник трудов Горьковского НИИ эпидемиологии и микробиологии. Горький, 1961. № 7. С. 3–34.
9. Ефимов Е.И., Дёгтева Г.К. Роль отраслевого НИИ в подготовке квалифицированных медицинских кадров // Всеросс. НПК «Современные проблемы преподавания эпидемиологии». Н. Новгород, 2001. С. 75–76.
10. Ефимов Е.И., Житова Е.И., Якимычева Е.А. Антонина Николаевна Мешалова – директор Горьковского института эпидемиологии и микробиологии 1940–1953 гг. (к 100-летию со дня рождения) // Материалы II рег. научно-просветительскойконф. «Краевая история медицины: люди, события, факты». Н. Новгород, 2008. С. 70–73.
11. Сучкова К.И. Обзор деятельности научной конференции Горьковского краевого института эпидемиологии и микробиологии // Горьковский медицинский журнал. 1933. № 3–4. С. 110–112.
Контактная информация:
Григорьева Галина Ивановна, доктор биологических наук, профессор, заместитель директора по научной работе, ФБУН ННИИЭМ им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
e-mail: grigmicro@yandex.ru

ОПЫТ РАЗРАБОТКИ И ВЕДЕНИЯ ГИС «ЭЛЕКТРОННЫЙ ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИЙ АТЛАС ПРИВОЛЖСКОГО ФЕДЕРАЛЬНОГО ОКРУГА» В.И. Ершов, Е.И. Ефимов, Г.Г. Побединский

ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии
и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора,
ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород, 603950, Россия
Рассмотрены основные этапы разработки геоинформационного проекта «Электронный эпидемиологический атлас Приволжского федерального округа». Применение атласа позволяет изучать развитие эпидемического процесса включенных в базы данных атласа нозологий в пространственно-временной динамике и представлять результаты в виде отчетов, тематических карт, таблиц или графиков. В рамках дальнейшего совершенствования действующей геоинформационной системы, расширения ее функций для применения в других федеральных округах разработана Концепция создания геоинформационной системы (ГИС) «Эпидемиологический атлас России».
Ключевые слова: электронный эпидемиологический атлас, геоинформационная система, геоинформационные системы и технологии.
Для цитирования: Ершов В.И., Ефимов Е.И., Побединский Г.Г. Опыт разработки и ведения ГИС «Электронный эпидемиологический атлас Приволжского федерального округа» // Здоровье населения и среда обитания. 2019. № 8 (317). С. 11–19. DOI: http://doi.org/10.35627/2219-5238/2019-317-8-11-19
ЛИТЕРАТУРА
1. Всероссийская конференция «ГИС в здравоохранении РФ: данные, аналитика, решения» [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://gishealth.ru/?page_id=441 (дата обращения: 21.06.2019).
2. Ефимов Е.И., Еруков С.В., Ершов В.И. Методологические основы разработки и функционирования географической информационной системы для целей мониторинга за эпидемиологической ситуацией // Материалы юбилейной Всероссийской научно-практической конференции, посвященной 90-летию ННИИЭМ им. академика И.Н. Блохиной и 20-летию Приволжского окружного центра по профилактике и борьбе со СПИД: «Научное обеспечение противоэпидемической защиты населения», 15–17 июня, 2009 г. Нижний Новгород: ННИИЭМ, 2009. С. 72–73.
3. Ефимов Е.И., Ершов В.И., Никитин П.Н. Применение ГИС-технологий в противоэпидемической защите населения ПФО // 12-й Международный научно-промышленный форум «Великие реки’2010»: Труды конгресса. Нижний Новгород: ННГАСУ, 2011. Т. 1. C. 279–281.
4. Ефимов Е.И., Корнилова Л.В., Рябикова Т.Ф., Никитин П.Н. Разработка геоинформационного проекта «Эпидемиологический атлас Приволжского федерального округа» // Международный научно-промышленный форум «Великие реки’2004»: Генеральные доклады, тезисы докладов. Нижний Новгород: ННГАСУ, 2004. С. 512–514.
5. Ефимов Е.И., Побединский Г.Г. О новой концепции Эпидемиологического атласа // 20-й Международный научно-промышленный форум «Великие реки’2018»:
9 Приказ Роспотребнадзора от 01 декабря 2017 г. № 1116 «О совершенствовании системы мониторинга, лабораторной диагностики инфекционных и паразитарных болезней и индикации ПБА в Российской Федерации». Труды научного конгресса. Нижний Новгород: ННГАСУ, 2018. Т. 1. C. 304–309.
6. Ефимов Е.И., Рябикова Т.Ф., Побединский Г.Г. и др. Внедрение электронного эпидемиологического атласа Приволжского федерального округа в практику работы санитарно-эпидемиологической службы // Международный научно-промышленный форум «Великие реки – 2005»: Тезисы докладов. Нижний Новгород: ННГАСУ, 2005. Т. 1. C. 334–335.
7. Ефимов Е.И., Рябикова Т.Ф., Побединский Г.Г. и др. Внедрение электронного эпидемиологического атласа ПФО в практику работы санитарно-эпидемиологической службы // Материалы научно-практической конференции «Новые технологии в профилактике, диагностике, эпиднадзоре и лечении инфекционных заболеваний». Нижний Новгород: Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет им. Н.И. Лобачевского, 2006. С. 87–88.
8. Ефимов Е.И., Рябикова Т.Ф., Побединский Г.Г. и др. Электронный эпидемиологический атлас ПФО как средство наглядной визуализации аналитических данных // Международный научно-промышленный форум «Великие реки-2006»: Генеральные доклады, тезисы докладов. Нижний Новгород: ННГАСУ, 2006. С. 319–320.
9. Журнал ArcReview. Тематический выпуск «ГИС в здравоохранении и медицине». [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.esri-cis.ru/news/arcreview/list.php?SECTION_ID=221 (дата обращения: 21.06.2019).
10. Журнал ArcReview. Тематический выпуск «ГИС и здоровье общества» [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.esri-cis.ru/news/arcreview/list.php?SECTION_ID=1098 (дата обращения: 21.06.2019).
11. Материалы Международной конференции «ИнтерКарто/ИнтерГИС» [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://intercarto.msu.ru/jour/index.php?lang=ru (дата обращения: 21.06.2019).
12. Потехина Н.Н., Ковалишена О.В., Пискарев Ю.Г. и др. Основы ретроспективного анализа инфекционной заболеваемости: Учеб. пособие для студентов мед. вузов / Под редакцией В.В. Шкарина, Р.С. Рахманова. Нижний Новгород: Изд-во НижГМА, 2009. 160 с.
13. Рябикова Т.Ф., Ефимов Е.И., Побединский Г.Г., Никитин П.Н. Геоинформационный проект «Эпидемиологический атлас по вирусным гепатитам Приволжского Федерального округа» // Материалы VI Всероссийской научно-практической конференции: «Вирусные гепатиты – проблемы эпидемиологии, диагностики, лечения и профилактики, 24-25 мая, 2005 г. М., 2005. C. 294–297.
14. Солнцев Л.А. Электронный атлас как средство систематизации эпидемиологических данных и мониторинга эпидемиологической ситуации // Материалы VI Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых и специалистов Роспотребнадзора: «Актуальные проблемы эпидемиологии и профилактической медицины», 22–24 октября, 2014 г. Ставрополь: ООО «Экспо-Медиа», 2014. С. 42–44.
15. Солнцев Л.А., Зайцева Н.Н., Ефимов Е.И. Электронная система хранения, представления и анализа эпидемиологической информации масштаба федерального округа // Современные технологии в медицине. 2017. № 4. С. 170–176.
16. Солнцев Л.А., Зайцева Н.Н., Ершов В.И., Ефимов Е.И. Электронный эпидемиологический атлас Приволжского федерального округа // Свидетельство о регистрации базы данных RUS 2015621143. Заявл. 05.06.2015. Опубл. 20.08.2015.
17. Солнцев Л.А., Зайцева Н.Н., Ефимов Е.И., Побединский Г.Г. Электронный эпидемиологический атлас Приволжского федерального округа (по материалам 2017 года) // Свидетельство о регистрации базы данных RUS 2018621866. Заявл. 08.11.2018. Опубл. 22.11.2018.
18. Электронный эпидемиологический атлас Приволжского федерального округа [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://epid-atlas.nniiem.ru/ (дата обращения: 21.06.2019).
19. Esri Health and Human Services GIS Conference [Электронный ресурс]. Available at: https://www.esri.com/en-us/about/events/health-human-services-conference/overview (accessed: 21.06.2019)
Контактная информация:
Побединский Геннадий Германович, кандидат технических наук, ведущий научный сотрудник, заведующий лабораторией ГИС-технологий и биоинформатики ФБУН ННИИЭМ им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
e-mail: lab.gis@nniiem.ru

ОЦЕНКА ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ К ДЕЗИНФЕКТАНТАМ КОАГУЛАЗОНЕГАТИВНЫХ СТАФИЛОКОККОВ, ЦИРКУЛИРУЮЩИХ В ДЕТСКОМ СТАЦИОНАРЕ Е.В. Беляева, Г.Б. Ермолина, И.С. Шкуркина, Е.В. Борискина, Д.В. Кряжев

ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии
и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора,
ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород, 603950, Россия
Исследована чувствительность к дезинфектантам и способность к формированию биопленки коагулазонегативных стафилококков, циркулирующих в детском стационаре г. Нижнего Новгорода. Показано, что наиболее часто резистентность к дезинфектантам и высокая степень биопленкообразования наблюдалась у культур S. haemolyticus. Проведено сравнение тестирования чувствительности к дезинфицирующему препарату «Авансепт» планктонных клеток коагулазонегативных стафилококков и этих же штаммов в форме биопленки. Установлено, что у штаммов, выращенных в форме биопленки, существенно возрастает резистентность к «Авансепту» по сравнению с планктонными культурами.
Ключевые слова: коагулазонегативные стафилококки, чувствительность к дезинфектантам, способность к формированию биопленки.
Для цитирования: Беляева Е.В. Ермолина Г.Б., Шкуркина И.С., Борискина Е.В., Кряжев Д.В. Оценка чувствительности к дезинфектантам коагулазонегативных стафилококков, циркулирующих в детском стационаре // Здоровье населения и среда обитания. 2019. № 8 (317). С. 20–24. DOI: http://doi.org/10.35627/2219-5238/2019- 317-8-20-24
ЛИТЕРАТУРА
1. Беляева Е.В., Ермолина Г.Б., Борискина Е.В. и др. Мониторинг биопленкообразующей способности у циркулирующих в детском стационаре коагулазонегативных стафилококков // Медицинский альманах. 2018. № 4 (55). С. 26–30.
2. Божкова С.А., Полякова Е.М., Краснова М.В. Преодоление устойчивости к гентамицину у метициллинорезистентных штаммов стафилококка // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2017. № 8-1. С. 97–193.
3. Воробьева Т.А. Лечение нозокомиальных инфекций у пациентов реанимационных отделений, вызванных метициллин-резистентным золотистым стафилококком // Вестник современных исследований. 2018. № 5.3 (20). С. 54–55.
4. Гапон М.Н., Твердохлебова Т.И., Мелоян Е.К. и др. Стафилококковая инфекция у пациентов родовспомогательных учреждений // Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2018. № 35 (35). С. 85–87.
5. Гладких П.Г. Значение микробных биопленок в инфекционной патологии человека (обзор) // Вестник новых медицинских технологий. Электронное издание. 2015. № 1. Публикация 3–2. Режим доступа: http// www.medtsu.tula.ru/VNMT/Bulletin/E2015-1/5096.pdf
6. Гостев В.В., Сидоренко С.В. Бактериальные биопленки и инфекции // Журнал инфектологии. 2010. № 2 (3). С. 4–15.
7. Детушева Е.В. Моделирование биопленки у бактерий на плотной питательной среде и изучение закономерностей формирования устойчивости к триклозану ; дис. … канд. биол. наук. Оболенск, 2016. 129 с.
8. Иванова М.Р., Каблахова Н.О., Хакунова М.Х. и др. Антибиотикочувствительность и факторы персистенции штаммов Staphylococcus aureus, выделенных при острых кишечных заболеваниях у детей и взрослых // Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2018. № 4. С. 45–48.
9. Ковалишена О.В. и др. Организация мониторинга устойчивости бактерий к дезинфицирующим средствам в лечебно-профилактических организациях различного профиля и на территориальном уровне: методические рекомендации. Н.Новгород: Издательство НижГМА, 2012. 40 с.
10. Попова А.Ю., Ежлова Е.Б., Игонина Е.И. Надзор за соблюдением санитарно-эпидемиологического законодательства при оказании медицинской помощи в целях обеспечения ее качества и безопасности // Вестник Росздравнадзора. 2016. № 1. С. 74–80.
11. Романова Ю.М., Диденко Л.В., Толордава Э.Р., Гинцбург А.Л. Биопленки патогенных бактерий и их роль в хронизации инфекционного процесса. Поиск средств борьбы с биопленками // Вестник Российской академии медицинских наук. 2011. № 10. С. 31–38.
12. Рыбальченко О.В., Бондаренко В.М., Орлова О.Г. и др. Дезорганизация биопленок клинических штаммов стафилококков метаболитами лактобацилл // Журнал микробиологии. 2010. № 6. С. 66–70.
13. Сергевнин В.И., Клюкина Т.В., Зуева Н.Г., Волкова Э.О. Устойчивость к дезинфицирующим средствам госпитального штамма Staphylococcus haemolyticus, выделенного в акушерском стационаре при неединичной заболеваемости новорожденных гнойно-септическими инфекциями // Здоровье населения и среда обитания. 2012. № 7 (232). С. 19–20.
14. Hancock V., Ferrieres L., Klemm P. Biofilm formation by asymptomatic and virulent urinary tract infections Escherichia coli strains. FEMS Immunol. Med. Microbiol., 2007, vol. 51, pp. 212–219.
15. Hoiby N., Bjarnsholt T., Givskov M. et al. Antibiotic resistance of bacterial biofilms. Int. J. Antimicrob. Agents., 2010, vol. 35, no. 4. pp. 322–332.
16. Lewis K. Multidrug tolerance of biofilms and persister cells. Curr. Top. Microbio. Immunol., 2008, vol. 322, pp. 107–131.
17. Mamtora D., Saseedharan S., Bhalekar P., Katakdhond S. Microbiological profile and antibiotic susceptibility pattern of Gram-positive isolates at a tertiary care hospital. J. Lab. Physicians., 2019, vol. 11 (2), pp. 144–148.
18. Mavri A., Smole Mo?ina S. Development to f antimicrobial resistance in Campylobacter jejuni and Campylobacter coli adapted to biocides. Int. J. Food Microbiol., 2013, vol. 160, no. 3, pp. 304–312.
19. Qadri I., Malik I., Ahmed K. Staphylococcus aureus infection in a pediatric ICU: a hospital based prospective observational study. Indian J. Crit. Care Med., 2019, no. 23 (5), pp. 210–212.
20. Taha L., Stegger M., S?derquist B. Staphylococcus lugdunensis: antimicrobial susceptibility and optimal treatment options. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 2019, 29 May, pp. 1–7. (https://doi.org/10.1007/s10096-019-03571-6).
Контактная информация:
Беляева Елена Вячеславовна, кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории микробиологии ФБУН ННИИЭМ им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
e-mail: labnikif@yandex.ru

ХАРАКТЕРИСТИКА ГОСПИТАЛЬНЫХ ШТАММОВ KLEBSIELLA PNEUMONIAE, ЦИРКУЛИРУЮЩИХ В ПЕДИАТРИЧЕСКОМ СТАЦИОНАРЕ И.В. Белова1, А.Г. Точилина1, И.В. Соловьева1, О.В. Ковалишена2, И.Ю. Широкова2, Л.Ю. Послова2, В.А. Жирнов1, С.Б. Молодцова1

1ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии
и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора,
ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород, 603950, Россия
2ФГБОУ ВО «Приволжский исследовательский медицинский университет» Минздрава России,
пл. Минина и Пожарского, д. 10/1, г. Нижний Новгород, 603005, Россия
Исследованы 26 штаммов K. pneumoniae ssp. pneumoniae, выделенных от больных и объектов внешней среды в течение периода эпидемического неблагополучия в педиатрическом стационаре. Проведены идентификация штаммов и их кластеризация, изучение антибиотикочувствительности, детекция детерминант устойчивости к антибиотикам, полногеномное секвенирование. Установлено, что в отделении циркулирует один штамм, характеризующийся идентичными RAPD-паттернами и чувствительностью к антибиотикам из групп цефалоспоринов, монобактамов, аминогликозидов, карбапенемов, фторхинолонов, сульфаниламидов и глицилциклидов. Штамм устойчив к ампициллину (МИК > 16) и нитрофурантоину (МИК > 64). Полногеномное секвенирование позволило охарактеризовать штамм как K. pneumoniae ssp. pneumoniae ST 3181К-54, анализ полногеномной последовательности показал наличие гена устойчивости к фосфомицину (fosA) и детерминант вирулентности – комплекса сидерофоров (аэробактина и энтеробактина), фимбрий 3 типа, системы утилизации железа kfu и кластера генов, ответственных за утилизацию аллантоина, что позволило рассматривать штамм как микроорганизм с высоким патогенным потенциалом, способный к быстрому распространению и диссеминированию в тканях.
Ключевые слова: Klebsiella pneumoniae, госпитальные штаммы, MALDI TOF, полногеномное секвенирование, RAPD, MLST.
Для цитирования: Белова И.В., Точилина А.Г., Соловьева И.В., Ковалишена О.В., Широкова И.Ю., Послова Л.Ю., Жирнов В.А., Молодцова С.Б. Характеристика госпитальных штаммов Klebsiella pneumoniae, циркулирующих в педиатрическом стационаре // Здоровье населения и среда обитания. 2019. № 8 (317). С. 25–29. DOI: http://doi.org/10.35627/2219-5238/2019-317-8-25-29
ЛИТЕРАТУРА
1. Баринов А.Л., Корначёв А.С. Эпидемиологический надзор за инфекциями, связанными с оказанием медицинской помощи, в отделениях патологии новорождённых на основе нового подхода к организации микробиологического мониторинга // Здоровье населения и среда обитания. 2015. № 2 (263). С. 42–44.
2. Бисекенова А.Л., Рамазанова Б.А., Мусаева А.А. Антибиотикорезистентность штаммов Enterobacteriaceae, выделенных от пациентов многопрофильных стационаров // Вестник КазНМУ. 2016. № 4. С. 50–54.
3. Корначёв А.С., Степанова Т.Ф., Баринов А.Л., Степанова К.Б. Совершенствование методологических подходов к реализации эпидемиологического надзора в отделениях патологии новорождённых // Здоровье населения и среда обитания. 2015. № 4 (265). С. 38–42.
4. Коробова А.Г. Мониторинг энтеробактерий с продукцией бета-лактамаз расширенного спектра, выделенных у больных гемоблаастозами при химиотерапии. Дисс… канд мед наук. М., 2018. 109 с.
5. Крыжановская О.А., Лазарева А.В., Алябьева Н.М. и др. Устойчивость к антибиотикам и молекулярные механизмы резистентности у карбапенем-нечувствительных изолятов Klebsiella pneumoniae, выделенных в педиатрических ОРИТ г. Москвы // Антибиотики и химиотерапия. 2016. Т. 61. № 7–8. С. 22–26.
6. Лев А.И. Молекулярно-генетическая характеристика клинических штаммов Klebsiella pneumoniae: вирулентность и устойчивость к антимикробным препаратам. Дисс… канд биол наук. Оболенск, 2018. 178 с.
7. Тапальский Д.В., Петренёв Д.Р. Распространенность Klebsiella pneumoniae – продуцентов карбапенемаз в Беларуси и их конкурентоспособность // КМАХ. 2017. Т. 19. № 2. С. 139–144.
8. Шагинян, И.А. Роль и место молекулярно-генетических методов в эпидемиологическом анализе внутрибольничных инфекций // КМАХ. 2000. т. 2. № 3. С. 82–95.
9. Эйдельштейн М.В., Журавлев В.С., Шек Е.А. Распространенность карбапенемаз среди нозокомиальных штаммов Enterobacteriaceae в России // Изв. Сарат. ун-та. 2017. Т. 17. № 1. С. 36–41.
10. Afzali H., Firoozeh F., Amiri A. et al. Characterization of CTX-M-Type Extend-Spectrum ?-Lactamase Producing Klebsiella spp. in Kashan, Iran. Hasan Jundishapur J Microbiol, 2015, vol. 8, no. 10. DOI: 10.5812/jjm.27967
11. Berrazeg M., Diene S., Drissi M. et al. Biotyping of Multidrug-Resistant Klebsiella pneumoniae Clinical Isolates from France and Algeria Using MALDI-TOF MS. PLoS, 2013, vol. 8, no. 4, pp. 1–10. DOI: 10.1371/journal.pone.0061428
12. Brisse S. Passet V., Haugaard A.B. et al. Wzi Gene sequencing, a rapid method for determination of capsular type for Klebsiella strains. J. Clin. Microbiol, 2013, vol. 51, no. 12, pp. 4073–4078.
13. Cosentino S., Voldby L. M., M?ller A. F., Lund O. PathogenFinder – Distinguishing Friend from Foe Using Bacterial Whole Genome Sequence Data. PLoS ONE, 2013, vol. 8, no. 10. DOI: 10.1371/journal.pone.0077302
14. Diancourt L, Passet V, Verhoef J et al. Multilocus Sequence Typing of Klebsiella pneumoniae nosocomial isolates. J Clin Microbiol, 2005, vol. 43, pp. 4178-82. DOI: 10.1128/JCM.43.8.4178-4182.2005
15. Eftekhar F, Naseh Z. Extended-spectrum ?-lactamase and carbapenemase production among burn and non-burn clinical isolates of Klebsiella pneumoniae. Iran J Microbiol, 2015, vol. 7, no. 3. pp. 144–149.
16. Gu D., Dong N., Zheng Z. et al. A fatal outbreak of ST11 carbapenem-resistant hypervirulent Klebsiella pneumoniae in a Chinese hospital: a molecular epidemiological study. Lancet Infect Dis., 2018., vol. 18, no. 1, pp. 37–46. DOI: 10.1016/S1473-3099(17)30489-9
17. Guo C., Yang X., Wu Y. et al. MLST-based inference of genetic diversity and population structure of clinical Klebsiella pneumoniae, China. Sci R., 2015, vol. 5, P. 7612. DOI: 10.1038/srep07612
18. Holden V., Breen P., Houle S., Dozois C., Bachman M. Klebsiella pneumoniae Siderophores Induce Inflammation, Bacterial Dissemination, and HIF-1? Stabilization during Pneumonia. MBio., 2016, vol. 7, no. 5, pp. e01397–16. DOI: 10.1128/mBio.01397-16.
19. Lev A.I., Astashkin E.I., Kislichkina A.A. et al. Comparative analysis of Klebsiella pneumoniae strains isolated in 2012-2016 that differ by antibiotic resistance genes and virulence genes prifiles. Pathog Glob Health, 2018, vol. 112, no. 3, pp. 142–151. DOI: 10.1080/20477724.2018.1460949
20. Piperaki E.T., Syrogiannopoulos G.A., Tzouvelekis L.S., Daikos G.L. Klebsiella pneumoniae: Virulence, Biofilm and Antimicrobial Resistance. Pediatr Infect Dis J., 2017, vol. 36, no. 10, pp. 1002–1005. DOI: 10.1097/INF.0000000000001675.
21. Sachse S., Bresan S., Erhard M. et al. Comparison of multilocus sequence typing, RAPD, and MALDI-TOF mass spectrometry for typing of ?-lactam–resistant Klebsiella pneumoniae strains. Diagn Microbiol Infect Dis., 2014, vol. 80, pp. 267–271. DOI: 10.1016/j.diagmicrobio.2014.09.005
22. Seemann T. Prokka: rapid prokaryotic genome annotation // Bioinformatics, 2014, vol. 30, no. 14, pp. 2068–9. DOI: 10.1093/bioinformatics/btu153
Контактная информация:
Точилина Анна Георгиевна, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории микробиома человека и средств его коррекции ФБУН ННИИЭМ им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
e-mail: lab-lb@yandex.ru

ЭТИОЛОГИЧЕСКАЯ СТРУКТУРА ЭНТЕРОВИРУСНЫХ ИНФЕКЦИЙ В РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ В 2017–2018 ГГ. Л.Н. Голицына1, В.В. Зверев1, С.Г. Селиванова1, Н.В. Пономарева1, А.Ю. Кашников1, Д.В. Созонов1, Т.А.Сашина1, Н.В. Епифанова1, И.А. Евплова1, А.В. Резайкин2, Е.Ю. Сапега3, Н.А. Новикова1, Е.И. Ефимов1

1ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии
и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора,
ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород, 603950, Россия
2ФБУН «Екатеринбургский научно-исследовательский институт вирусных инфекций» Роспотребнадзора, ул. Летняя, д. 23, г. Екатеринбург, 620030, Россия
3ФБУН «Хабаровский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии» Роспотребнадзора, ул. Шевченко, д. 2, г. Хабаровск, 680610, Россия
При обследовании 4 122 пациентов с различными клиническими формами энтеровирусной инфекции (ЭВИ) в период 2017–2018 гг. тип энтеровируса был установлен в 2 753 случаях. Идентифицированы вирусы 42 типов, относящиеся к видам Enterovirus A-В-С. Соотношение видов ЭВ-А:ЭВ-В:ЭВ-С составило 51,29:47,06:1,65 %. В образцах из 413 ООС идентифицированы неполиомиелитные энтеровирусы 29 типов, три из которых – СА14, ЭВА76 и ЕСНО25 не были обнаружены в данный период у больных с ЭВИ. Доминирующим агентом в этиологической структуре ЭВИ в 2017 г. на большинстве территорий был вирус Коксаки А6, обусловивший резкий подъем заболеваемости экзантемными формами; ведущими этиологическими агентами энтеровирусного менингита (ЭВМ) являлись вирусы ЕСНО30, ЕСНО9, ЕСНО18. В 2018 г. в целом по России наблюдалось снижение заболеваемости как всеми формами ЭВИ, так и ЭВМ вследствие снижения активности циркуляции эпидемических вариантов вирусов Коксаки А6 и ЕСНО30. Эпидемический процесс ЭВМ в 2018 г. поддерживался активизировавшимися или сохранившими активность вирусами ЕСНО6, Коксаки В5, ЕСНО9, ЕСНО18 и другими вирусами вида Энтеровирус В. Сохраняющийся относительно высокий уровень заболеваемости экзантемными формами ЭВИ помимо вируса Коксаки А6 поддерживался активизировавшимися вирусами Коксаки А16, Коксаки А5 и другими вирусами вида Энтеровирус А. Результаты филогенетического анализа последовательностей генома доминировавших этиологических агентов ЭВИ указывают, что в 2018 г. состоялся множественный занос эпидемических вариантов энтеровирусов на территорию РФ, поддержавший эпидпроцесс ЭВИ/ЭВМ в целом по РФ и вызвавший осложнение эпидситуации в ряде субъектов. Не исключено, что этим событиям способствовал приезд большого числа болельщиков на Чемпионат мира по футболу 2018 и безвизовый въезд на территорию РФ для этой категории туристов до конца года.
Ключевые слова: энтеровирусная инфекция, менингит, экзантема, энтеровирусы.
Для цитирования: Голицына Л.Н., Зверев В.В., Селиванова С.Г., Пономарева Н.В., Кашников А.Ю., Созонов Д.В., Сашина Т.А., Епифанова Н.В., Евплова И.А., Резайкин А.В., Сапега Е.Ю., Новикова Н.А., Ефимов Е.И. Этиологическая структура энтеровирусных инфекций в Российской Федерации в 2017–2018 гг. // Здоровье населения и среда обитания. 2019. № 8 (317). С. 30–38. DOI: http://doi.org/10.35627/2219-5238/2019-317-8-30-38
ЛИТЕРАТУРА
1. Бичурина М.А., Романенкова Н.И., Новикова Н.А., Голицына Л.Н., Розаева Н.Р., Канаева О.И., Ермакова М.В., Камынина Л.С., Михайлова Е.А., Валдайцева Н.В., Леонова Н.П., Иванова Т.Г. Групповые заболевания энтеровирусной инфекцией, обусловленные вирусами Коксаки А16, на Северо-западе России // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2014. № 2. С. 51–59.
2. Голицына Л.Н., Зверев В.В., Епифанова Н.В., Сашина Т.А., Кашников А.Ю., Созонов Д.В., Резайкин А.В., Сапега Е.Ю., НовиковамН.А. Неполиомиелитные энтеровирусы в Российской Федерации в 2017 году // Заболеваемость, этиологическая структура и вопросы профилактики энтеровирусной (неполио) инфекции [Электронный ресурс]. 2018. № 5. С. 5–12. Режим доступа: https://nniiem.ru/development/informanalit/evi.html (дата обращения: 24.06.2019)
3. Голицына Л.Н. Зверев В.В., Парфенова О.В., Епифанова Н.В., Сашина Т.А., Кашников А.Ю., Григорьева Г.И., Новикова Н.А. Вирус Коксаки А6 в Российской Федерации в 2014 году // Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2015. № 28. С. 12–20.
4. Голицына Л.Н., Зверев В.В., Сашина Т.А., Епифанова Н.В., Новикова Н.А. Эпидемические варианты неполиомиелитных энтеровирусов в Российской Федерации // Сборник трудов IX Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Молекулярная диагностика-2017», 18–20 апреля 2017 г. М., 2017. Т. 2. С. 351–352.
5. Голицына Л.Н., Зверев В.В., Селиванова С.Г., Пономарева Н.В., Кашников А.Ю., Созонов Д.В., Сашина Т.А., Епифанова Н.В., Новикова Н.А., Ефимов Е.И. Эпидемиологическая ситуация по энтеровирусной инфекции в РФ в 2018 году: заболеваемость, результаты лабораторной диагностики, прогноз на 2019 год // Заболеваемость, этиологическая структура и вопросы профилактики энтеровирусной (неполио) инфекции. 2019. № 6. С. 5–12. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://nniiem.ru/development/informanalit/evi.html (дата обращения: 24.06.2019)
6. Морозова Н.С., Чернявская О.П., Михайлова Ю.М., Новикова Н.А., Голицына Л.Н., Зверев В.В., Фомина С.Г. Энтеровирусная (неполио) инфекция в Российской Федерации в сезон 2013 года // Здоровье населения и среда обитания. 2014. № 10. С. 34–37.
7. О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2018 году: Государственный доклад. М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2019. 254 с.
8. Сапега Е.Ю., Бутакова Л.В., Троценко О.Е., Горяев Д.В., Дмитриева Г.М., Детковская Т.Н., Жданова Н.И., Зайцева Т.А., Игнатьева М.Е., Курганова О.П., Копылов П.В., Лапа С.Э., Пережогин А.Н., Рубцова А.А., Фунтусова О.А., Ханхареев С.С., Щучинов Л.В. Молекулярно-эпидемиологический анализ энтеровирусов, циркулирующих на территории Дальневосточного и Сибирского федеральных округов Российской Федерации, в том числе участвующих в возникновении очагов групповой заболеваемости // Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2018. № 35 (35). С. 5–14.
9. Сапега Е.Ю., Бутакова Л.В., Троценко О.Е., Зайцева Т.А., Гарбуз Ю.А., Балахонов С.В., Каравянская Т.Н., Носков А.К., Лебедева Л.А., Резник В.И., Севостьянова А.В. Роль молекулярно-генетических методов исследования в выявлении потенциальных рисков завоза энтеровирусной инфекции на территорию Хабаровского края // Здоровье населения и среда обитания. 2018. № 2 (299). С. 44–51.
10. Broberg E.K., Simone B., Jansa J., The EU/EEA Member State Contributors. Upsurge in echovirus 30 detections in five EU/EEA countries, April to September, 2018. Euro Surveill, 2018, vol. 23 (44), pp. 1–12. DOI: 10.2807/1560-7917.ES.2018.23.44.1800537
11. Chen M., He S., Yan Q., et al. Severe hand, foot and mouth disease associated with Coxsackievirus A10 infections in Xiamen, China in 2015. J. Clin. Virol., 2017, vol. 93, pp. 20–24. DOI: 10.1016/j.jcv.2017.05.011
12. Drummond A.J., Suchard M.A., Xie D., Rambaut A. Bayesian phylogenetics with BEAUti and the BEAST 1.7. Mol. Biol. Evol., 2012, vol. 29 (8), pp. 1969–73.
13. Hassel C., Mirand A., Farkas A. et al. Phylogeography of coxsackievirus A16 reveals global transmission pathways and recent emergence and spread of a recombinant genogroup. J. Virol., 2017, vol. 91, pp. e00630–17. DOI:10.1128/JVI.00630-17
14. Karrasch M., Fischer E., Scholten M. et al. A severe pediatric infection with a novel enterovirus A71 strain, Thuringia, Germany. J. Clin. Virol., 2016, vol. 84, pp. 90–95.
15. Lugo D., Krogstad P. Enteroviruses in the early 21st century: new manifestations and challenges. Curr. Opin. Pediatr., 2016, vol. 28 (1), pp. 107–113. DOI: 10.1097/MOP.0000000000000303
16. Messacar K., Schreiner T.L., Maloney J.A., et al. A cluster of acute flaccid paralysis and cranial nerve dysfunction temporally associated with an outbreak of enterovirus D68 in children in Colorado, USA. The temporal association of enterovirus D68 with acute flaccid paralysis is detailed in this article, expanding the ongoing debate regarding the neurotropism of this virus. The Lancet, 2015, vol. 385, pp. 1662–1671. DOI: 10.1016/S0140-6736(14)62457-0
17. Nix W.A., Oberste M.S., Pallansch M.A. Sensitive, seminested PCR amplification of VP1 sequences for direct identification of all enterovirus serotypes from original clinical specimens. J. Clin. Microbiol., 2006, vol. 44, pp. 2698–2704.
18. Puenpa J., Vongpunsawad S., Osterback R., et al. Molecular epidemiology and the evolution of human coxsackievirus A6. J. Gen. Virol, 2016, vol. 97 (12), pp. 3225–3231. DOI: 10.1099/jgv.0.000619
19. Tamura K., Peterson D., Peterson N. et al. MEGA5: Molecular Evolutionary Genetics Analysis using Maximum Likelihood, Evolutionary Distance, and Maximum Parsimony Methods. Mol. Biol. and Evol., 2011, vol. 28. pp. 273–2739.
20. Zell R., Delwart E., Gorbalenya A.E. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Picornaviridae. J. Gen. Virol., 2017, vol. 98 (10), pp. 2421–2422. DOI: 10.1099/jgv.0.000911
Контактная информация:
Голицына Людмила Николаевна, кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник ФБУН ННИИЭМ им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
e-mail: lyudmila_galitzina@mail.ru

МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ШТАММА CUTIBACTERIUM (PROPIONIBACTERIUM) ACNES A1-14 КАК ПРЕДСТАВИТЕЛЯ СИМБИОТИЧЕСКОЙ МИКРОБИОТЫ ЧЕЛОВЕКА А.Е. Алексеева, Н.Ф. Бруснигина, А.Ю. Кашников, Н.А. Новикова

ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии
и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора,
ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород, 603950, Россия
Бактерии вида Cutibacterium (ранее Propionibacterium) acnes, с одной стороны, являются представителями нормальной микробиоты кожи человека, а с другой, – способствуют развитию воспалительных процессов, таких как акне, инфекционные осложнения в посттравматический и постоперационный период глаза (эндофтальмит), сердечно-сосудистой системы (эндокардит), центральной нервной системы и опорно-двигательного аппарата (остеомиелит), имплант-ассоциированные инфекции. Используются различные молекулярно-генетические подходы для определения эпидемически значимых генотипов, обладающих высоким патогенетическим потенциалом и генотипов низкопатогенных комменсалов. Впервые проведено полногеномное секвенирование штамма C. acnes A1-14, выделенного из толстого кишечника здорового человека. В результате выравнивания и объединения нуклеотидная последовательность генома составила 2 484 560 пар нуклеотидов. Согласно результатам генотипирования штамм относится к филотипу II, риботипу 6 и сиквенс-типу 7 (схема McDowell A. с соавторами) или 73 (схема Lomholt H.B., Kilian M.). Показано, что в геноме С. acnes A1-14 отсутствуют мобильные элементы, детерминанты патогенности и антибиотикорезистентности, мутации в генах 16S рРНК, 23S рРНК, gyrA, gyrB, parC, parE, установлено наличие CRISPR-Cas структуры. Обнаружена внехромосомная последовательность, принадлежащая геному бактериофага семейства Syphoviridae. С использованием электронно-микроскопического метода исследования дана морфологическая характеристика вириона бактериофага, присутствие которого в виде экстрахромосомной структуры характерно для многих штаммов C. acnes. Таким образом, результаты, полученные в нашем исследовании, дополняют представления о молекулярно-генетических особенностях штаммов C. acnes, выделенных из различных биотопов человека и являющихся представителями симбиотической микробиоты.
Ключевые слова: Cutibacterium (Propionibacterium) acnes, полногеномное секвенирование, MLST, генотипирование, факторы патогенности, CRISPR-Cas, бактериофаг.
Для цитирования: Алексеева А.Е., Бруснигина Н.Ф., Кашников А.Ю., Новикова Н.А. Молекулярно-генетическая характеристика штамма Cutibacterium (Propionibacterium) acnes A1-14 как представителя симбиотической микробиоты человека // Здоровье населения и среда обитания. 2019. № 8 (317). С. 39–44. DOI: http://doi.org/10.35627/2219-5238/2019-317-8-39-44
ЛИТЕРАТУРА

  1. Вирусология. Методы // Под редакцией Б. Мейхи. М.: Мир, 1988. 172 с.
  2. Achermann Y., Goldstein E.J.C., Coenye T., Shirtliffa M.E. Propionibacterium acnes: from commensal to opportunistic biofilm-associated implant pathogen. Clin. Microbiol. Rev., 2014, no. 3,pp. 419–440.
  3. Bae Y., Ito T., Iida T., Uchida K., Sekine M., Nakajima Y. et al. Intracellular Propionibacterium acnes infection in glandular epithelium and stromal macrophages of the prostate with or without cancer. PLoS ONE, 2014, no. 2 (9), 11 p. Available at: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0090324 (accessed: 17.01.2017).
  4. Br?ggemann H. Insights in the pathogenic potential of Propionibacterium acnes from its complete genome. Semin. Cutan. Med. Surg., 2005, no. 2 (24), pp. 67–72.
  5. Br?gemann H., Lomholt H.B., Tettelin H., Kilian M. CRISPR/cas loci of type II Propionibacterium acnes confer immunity against acquisition of mobile elements present in type I P. acnes. PLoS ONE, 2012, no. 3 (7), 10 p. Available at: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0034171 (accessed: 17.01.2017).
  6. Eishi Y., Suga M., Ishige I., Kobayashi D., Yamada T., Takemura T. et al. Quantitative analysis of mycobacterial and propionibacterial DNA in lymph nodes of Japanese and European patients with sarcoidosis. J. Clin. Microbiol., 2002, no. 40, pp. 198–204.
  7. Fitz-Gibbon S., Tomida S., Chiu B.-H., Nguyen L., Du C., Liu M. et al. Propionibacterium acnes strain populations in the human skin microbiome associated with acne. J. Invest. Dermatol., 2013, no. 9, pp. 2152–2160.
  8. Ghachi M.E., Bouhss A., Blanot D., Mengin-Lecreulx D. The bacA gene of Escherichia coli encodes an undecaprenyl pyrophosphate phosphatase activity. J. Biol. Chem., 2004, no. 29 (279), pp. 30106–30113.
  9. Jakab E., Zbinden R., Gubler J., Ruef C., von Graevenitz A., Krause M. Severe infections caused by Propionibacterium acnes: an underestimated pathogen in late postoperative infections. Yale J Biol Med., 1996, no. 6 (69), pp. 477–482.
  10. Lodes M.J., Secrist H., Benson D.R., Jen S., Shanebeck K.D., Guderian J. et al. Variable expression of immunoreactive surface proteins of Propionibacterium acnes. Microbiology, 2006, no. 12, pp. 3667–3681.
  11. Lomholt H.B., Kilian M. Population genetic analysis of Propionibacterium acnes identifies a subpopulation and epidemic clones associated with acne. PLoS ONE, 2010, no. 8, 10 p. Available at: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0012277 (accessed: 20.01.2017)
  12. Lomholt H.B., Scholz C.F.P., Br?ggemann H., Tettelin H., Kilian M. A comparative study of Cutibacterium (Propionibacterium) acnes clones from acne patients and healthy controls. Anaerobe, 2017, vol. 47, pp. 57–63.
  13. Lood R., Collin M. Characterization and genome sequencing of two Propionibacterium acnes phages displaying pseudolysogeny. BMC Genomics, 2011, no. 12 (198), 14 p. Available at: https://doi.org/10.1186/1471-2164-12-198 (accessed: 20.04.2015)
  14. Makarova K.S., Wolf Y.I., Alkhnbashi O.S., Costa F., Shah S.A., Saunders S.J. et al. An updated evolutionary classification of CRISPR–Cas systems. Nat. Rev. Microbiol., 2015, no. 11 (13), pp. 722–736.
  15. McDowell A., Perry A.L., Lambert P.A., Patrick S. A new phylogenetic group of Propionibacterium acnes. J. Med. Microbiol., 2008, no. 57, pp. 218–224.
  16. McDowell A., Barnard E., Nagy I., Gao A., Tomida S., Li H. et al. An expanded multilocus sequence typing scheme for Propionibacterium acnes: investigation of «pathogenic», «commensal» and antibiotic resistant strains. PLoS ONE, 2012, no. 7, 14 p. Available at: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0041480 (accessed: 20.01.2017)
  17. Romanyuk L.V., Tovkach F.I., Ivanitsa T.V., Kushkina A.I., Ostapchuk A.N., Gorb T.E. Abortive infection in Erwinia carotovora J2, as a source of nanoparticles of phage nature. Мiкробiологiчний журнал, 2010, no. 6, pp. 51–57. (In Ukrain.)
  18. Schaeverbeke T., Lequen L., de Barbeyrac B., Labbe L., Bebear C.M., Morrier Y. et al. Propionibacterium acnes isolated from synovial tissue and fluid in a patient with oligoarthritis associated with acne and pustulosis. Arthritis Rheum., 1998, no. 10 (41), pp. 1889–1893.
  19. Scholz C.F., Kilian M. The natural history of cutaneous propionibacteria and reclassification of selected species within the genus Propionibacterium to the proposed novel genera Acidipropionibacterium gen. nov., Cutibacterium gen. nov. and Pseudopropionibacterium gen. nov. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2016, no. 11 (66), pp. 4422–4432.
  20. Tomida S., Nguyen L., Chiu B.-H., Liu J., Sodergren E., Weinstock G.M. et al. Pan-genome and comparative genome analyses of Propionibacterium acnes reveal its genomic diversity in the healthy and diseased human skin microbiome. mBio., 2013, no. 3 (4), 11 p. Available at: http://mbio.asm.org/content/4/3/e00003-13 (accessed: 27.01.2017).
Контактная информация:
Алексеева Анна Евгеньевна, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории метагеномики и молекулярной индикации патогенов ФБУН ННИИЭМ им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
e-mail: a.e.alexeeva79@mail.ru

МЕХАНИЗМЫ АНТИБИОТИКОРЕЗИСТЕНТНОСТИ УРОГЕНИТАЛЬНЫХ МИКОПЛАЗМ Е.А. Колесникова, Н.Ф. Бруснигина, Г.И. Григорьева

ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии
и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора,
ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород, 603950, Россия
Урогенитальные микоплазмы (Mycoplasma genitalium, Mycoplasma hominis и Ureaplasma spp.) превалируют в настоящее время в этиологии инфекций урогенитального тракта и отличаются высоким уровнем генетического полиморфизма, ответственного за возникновение их антибиотикорезистентности. В обзоре представлены данные отечественных и зарубежных исследователей о механизмах устойчивости микоплазм и уреаплазм к антибиотикам, рассмотрены вопросы приобретения микоплазмами детерминант антибиотикорезистентности. Новые знания о механизмах устойчивости являются важной теоретической базой для совершенствования мероприятий по ограничению и предупреждению распространения антибиотикорезистентных бактерий.
Ключевые слова: Mycoplasma, Ureaplasma, механизмы устойчивости, макролиды, фторхинолоны, тетрациклины.
Для цитирования: Колесникова Е.А., Бруснигина Н.Ф., Григорьева Г.И. Механизмы антибиотикорезистентности урогенитальных микоплазм // Здоровье населения и среда обитания. 2019. № 8 (317). С. 45–49. DOI: http://doi.org/10.35627/2219-5238/2019-317-8-45-49
ЛИТЕРАТУРА
1. Байтяков В.В., Сыркина М.Г., Радаева О.А. Антибиотикорезистентность культур U. urealyticum и M. hominis, полученных от жителей Республики Мордовия // Акушерство. Гинекология. 2016. Т. 93. № 1. С. 72–75.
2. Белова А.В., Никонов А.П. Генитальные микоплазмы (U. parvum, U. urealyticum, M. hominis, M. genitalium) в структуре инфекционных осложнений в акушерстве, гинекологии и перинатологии // Альманах клинической медицины. 2015. № 39. С. 140–150.
3. Голуб А.В., Козлов Р.С. Рациональная антибактериальная терапия – путь к сохранению активности антибиотиков // Инфекционные болезни. 2015. № 1. С. 4–9.
4. Заручейнова О.В., Вербов В.Н., Семенов Н.В. Сравнительная оценка чувствительности урогенитальных микоплазм Mycoplasma hominis и Ureaplasma spp. к антимикробным препаратам // Материалы научно-практической конференции молодых ученых и специалистов: «От эпидемиологии к диагностике инфекционных заболеваний: подходы, традиции, инновации», 23–25 апреля 2014 г. СПб., 2014. Т. 4. № 1. С. 67–67.
5. Козлов Р.С. Резистентность к антимикробным препаратам как реальная угроза национальной безопасности // Русский медицинский журнал. 2014. № 4. С. 321–323.
6. Кузьмин В.Н., Гусейнзаде М.И. Эффективная антибактериальная терапия микоплазменной инфекции у женщин репродуктивного возраста // Consilium Medicum. 2014. № 3. С. 49–52.
7. Пандырева О.Н., Аршинский М.И. Частота выявления микоплазм в урогенитальном тракте у беременных женщин методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени (ПЦР-РВ) // Здравоохранение Дальнего Востока. 2016. № 4. С. 43–47.
8. Плахова К.И. Клиническое значение генетической вариабельности генитальных микоплазм // Вестник дерматологии и венерологии. 2015. № 2. С. 76–83.
9. Рыжих П.Г., Гущин А.Е. Распространение штаммов Mycoplasma genitalium, имеющих мутацию резистентности к макролидам, на территории Российской Федерации (Москвы) // Материалы 8-й Всероссийской научно-практической конференции с международным участием: «Молекулярная диагностика 2014», 18–20 марта, 2014. М., 2014. Т. 1. С. 174–175.
10. Сидоренко С.В., Тишков В.И. Молекулярные основы резистентности к антибиотикам // Успехи биологической химии. 2004. Т. 4. С. 263–306.
11. Сорока А.Е., Акопиан Т.А., Тараскина А.М., Савичева А.М., Говорун В.М. Интеграция гена tet(M) в геном M. hominis и молекулярное картирование конъюгативного транспозона Tn916 // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2002. Т. 4. Приложение 1. С. 43–43.
12. Тимичева О.А., Глухова Е.С., Андреева А.А., Кузьмина Г.В., Никитина Г.А., Казымова Г.Ф. Антимикробная резистентность, причины распространения и меры борьбы с устойчивостью микроорганизмов // Материалы Международной научно-практической конференции: «Современные исследования природных и социально-экономических систем. Инновационные процессы и проблемы развития естественнонаучного образования», 25–26 октября 2018 г. /Под ред. О.В. Янцер, Д.Н. Липухина, Ю.Р. Ивановой. Екатеринбург, 2018. С. 51–56.
13. Чернов В.М., Чернова О.А., Санчес-Вега Х.Т., Колпаков А.И., Ильинская О.Н. Микоплазменные контаминации клеточных культур: везикулярный трафик у бактерий и проблема контроля инфектогенов // ACTA NATURAE. 2014. Т. 6. № 3 (22). С. 43–54 (русскоязычная версия).
14. Чернова О.А., Медведева Е.С., Музыкантов А.А., Баранова Н.Б., Чернов В.М. Микоплазмы и их устойчивость к антибиотикам: проблемы и перспективы контроля микоплазменных инфекций и контаминаций клеточных культур // ACTA NATURAE (русскоязычная версия). 2016. Т. 8. № 2 (29). С. 27–38.
15. Azizmohammadi S. Antimicrobial Susceptibility Patterns of Ureaplasma urealyticum and Mycoplasma hominis Isolated From Pregnant Women. Iran Red Crescent Med J., 2015, vol. 12, no. 17. DOI: 10.5812/ircmj.17211
16. Bayraktar M.R., Ozerol I.H., Gucluer N., Celik O. Prevalence and antibiotic susceptibility of Mycoplasma hominis and Ureaplasma urealyticum in pregnant women. International Journal of Infectious Diseases, 2010, no. 14, pp. 90–95.
17. Beeton M.L., Chalker V.J., Jones L.C., Maxwell N.C., Spiller O.B. Antibiotic Resistance among Clinical Ureaplasma Isolates Recovered from Neonates in England and Wales between 2007 and 2013. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2016, vol. 60, no. 1, pp. 52–56.
18. Ekiel А., Aptekorz M., K?uci?ski P., Smolec D., Wiechu?a B., J??wiak J., Martirosian G. Prevalence of Urogenital Mycoplasmas Among Men with NGU in Upper Silesia, Poland. Preliminary Study. Polish Journal of Microbiology, 2016, vol. 65, no. 1, pp. 93–95.
19. Fernаndez L., Robert E., Hancock W. Adaptive and Mutational Resistance: Role of Porins and Efflux Pumps in Drug Resistance. Clinical Microbiology Reviews, 2012, vol. 25, no. 4, рр. 661–681.
20. Kawai Y., Nakura Y., Wakimoto T., Nomiyama M., Tokuda T., Takayanagi T. et al. In Vitro Activity of Five Quinolones and Analysis of the Quinolone Resistance-Determining Regions of gyrA, gyrB, parC, and pare in Ureaplasma parvum and Ureaplasma urealyticum Clinical Isolates from Perinatal Patients in Japan. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2015, vol. 59, no. 4, pp. 2358–2364.
21. Lee M.Y., Kim M.H., Lee W.In., Kang So.Y., Jeon Y.La. Prevalence and Antibiotic Susceptibility of Mycoplasma hominis and Ureaplasma urealyticum in Pregnant Women. Yonsei Med J., 2016, vol. 5, no. 57, pp. 127–1275.
22. Shipitsyna E., Savicheva А., Golparian D., Lagos A.C., Unemo М., Rumyantseva Т., Khayrullina G., Guschin А., Edelstein I. et al. Prevalence of macrolide and fluoroquinolone resistance-mediating mutations in Mycoplasma genitalium in five cities in Russia and Estonia. J. PLOS ONE, 2017, vol. 12, no. 4, DOI: 10.1371/journal.pone.0175763
23. Zeng X.Y., Xin N., Tong X.N., Wang J.Y., Liu Z.W. Prevalence and antibiotic susceptibility of Ureaplasma urealyticum and Mycoplasma hominis in Xi’an, China. Eur J Clin Microbiol Infect Dis., 2016, vol. 8, рр. 3–7.
Контактная информация:
Колесникова Елена Александровна, научный сотрудник лаборатории метагеномики и молекулярной индикации патогенов ФБУН ННИИЭМ им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
e-mail: shmelevael@yandex.ru

РАСПРОСТРАНЕНИЕ МУТАЦИЙ РЕЗИСТЕНТНОСТИ И СУБТИПОВ ВИЧ-1 КАК ПОКАЗАТЕЛЬ ДИНАМИКИ ЭПИДЕМИИ ВИЧ-ИНФЕКЦИИ В ПРИВОЛЖСКОМ ФЕДЕРАЛЬНОМ ОКРУГЕ В 2016–2018 ГГ. О.В. Парфенова, О.Ю. Пекшева, Н.Н. Зайцева

ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии
и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора,
ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород, 603950, Россия
Проведено изучение мутаций резистентности ВИЧ к антиретровирусным препаратам в период широкого применения антиретровирусной терапии и особенностей циркуляции субтипов вируса в субъектах Приволжского федерального округа (ПФО) в период с 2016 по 2018 г. на образцах плазмы крови ВИЧ-инфицированных пациентов. Проведены генотипирование мутаций резистентности к АРВП и статистический анализ. Выявлены наиболее распространенные мутации, детерминирующие резистентность в гене обратной транскриптазы, наиболее часто встречающиеся и специфические мутации. Анализ распространенности мутаций устойчивости вируса к разным группам АРВП позволяет разработать подходы для предупреждения дальнейшего возникновения резистентных штаммов ВИЧ и минимизации их негативного воздействия на организм пациента. С развитием эпидемии наблюдается всё большее разнообразие в пейзаже субтипов ВИЧ-1, циркулирующих на территории ПФО. Паттерны точечных мутаций, связанных с неудачей АРВТ в различных субтипах, отличаются.
Ключевые слова: резистентность ВИЧ, субтипы ВИЧ-1, Приволжский федеральный округ, эпидемия ВИЧ-инфекции.
Для цитирования: Парфенова О.В., Пекшева О.Ю., Зайцева Н.Н. Распространение мутаций резистентности и субтипов ВИЧ-1 как показатель динамики эпидемии ВИЧ-инфекции в Приволжском федеральном округе в 2016–2018 гг. // Здоровье населения и среда обитания. 2019. № 8 (317). С. 50–55. DOI: http://doi.org/10.35627/2219-5238/2019-317-8-50-55
ЛИТЕРАТУРА
1. Бобкова М.Р. Лекарственная устойчивость ВИЧ. М.: Человек, 2014. 288 c.
2. Зайцева Н.Н., Альтова Е.Е., Кузоватова Е.Е. ВИЧ-инфекция в ПФО в 2018 году: [Электронный ресурс] // Информационный бюллетень. 2019. Т. 74. 31 c. Режим доступа: https://nniiem.ru/file/razrabotki/2018/vich-pfo-2018g.pdf (дата обращения: 07.06.2019).
3. Зайцева Н.Н., Носов Н.Н., Парфенова О.В., Пекшева О.Ю., Ефимов Е.И. Современные молекулярно-генетические методы исследования в эпидемиологическом надзоре за ВИЧ-инфекцией: [Электронный ресурс] // МедиАль. 2014. № 2. С. 122–134. Режим доступа: http://www.medial-journal.ru/ru/journal/issue-15/article-117.html(дата обращения: 07.06.2019).
4. Зайцева Н.Н., Носов Н.Н., Парфенова О.В., Пекшева О.Ю., Ефимов Е.И. Современные молекулярно-генетические технологии в мониторинге за циркуляцией субтипов ВИЧ-1 // Современные технологии в медицине. 2016. Т. 8. № 1. С. 121–127.
5. Коломеец А.Н., Сергеева И.В., Ястребов В.К., Тюменцев А.Т., Довгополюк Е.С., Нурпейсова А.Х., Рубина Ю.Л., Левахина Л.И. Распространенность в Сибири мутаций вируса иммунодефицита человека, ассоциированных с устойчивостью к антиретровирусным препаратам // Здоровье населения и среда обитания. 2015. № 5 (266). С. 37–40
6. Парфенова О.В., Пекшева О.Ю., Зайцева Н.Н. Мутации, определяющие резистентность ВИЧ к антиретровирусной терапии в ПФО в 2008–2012 гг. // Медицинский Альманах. 2013. № 2 (26). С. 79–82.
7. Brenner Bluma G., Ibanescu Ruxandra-Ilinca, Hardy Isabelle, Roger Michel. Genotypic and Phylogenetic Insights on Preventionof the Spread of HIV-1 and Drug Resistance in «Real-World» Settings. Viruses, 2018, vol. 10, Issue 1, p. 10.
8. Rath A.B., Olshen R.A., Halpern J., Merigan T.C. Persistence versus Reversion of 3TC Resistance in HIV-1 Determine the Rate of Emergence of NVP Resistance. Viruses, 2012, vol. 4, pp. 1212–1234.
9. Rhee S.Y., Sankaran K., Varghese V., Winters M.A., Hurt C.B., Eron J.J., Parkin N., Holmes S.P., Holodniy M., Shafer R.W. HIV-1 Protease, Reverse Transcriptase and Integrase Variation. Journal of Virology, 2016, vol. 90, no. 13, pp. 6058–6070.
Контактная информация:
Парфенова Ольга Владимировна, кандидат биологических наук, биолог Приволжского окружного центра по профилактике и борьбе со СПИД, ФБУН ННИИЭМ им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
e-mail: olgaparfenova1960@mail.ru

КОМПЛЕКСНЫЙ ПОДХОД К ОЦЕНКЕ ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКОГО РИСКА ГЕПАТИТА А В СОВРЕМЕННЫХ УСЛОВИЯХ А.А. Залесских, Т.Н. Быстрова, А.В. Полянина

ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии
и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора,
ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород, 603950, Россия
Гепатит А продолжает оставаться наиболее частой причиной вирусного гепатита. Выраженная автономность эпидемического процесса инфекции, полиморфность ее клиники и другие факторы затрудняют применение универсальных подходов прогнозирования заболеваемости гепатитом А. Целью настоящей работы являлась разработка комплексного подхода для оценки эпидемиологического риска развития гепатита А. Краткосрочное прогнозирование уровня инцидентности гепатита А в Н. Новгороде за период 1994–2017 гг. проводилось с помощью методов с расчетом максимальной стабильности и уравнения регрессии. Концентрирование возбудителя в сточных водах проводилось методом с использованием флизелиновых пакетов с макропористым стеклом. РНК возбудителя определялась методом ПЦР в режиме реального времени. Распространенность анти-ВГА IgG в Н. Новгороде изучалась иммуноферментным методом среди условно здорового населения возрастом от 1 года до 60 лет. Точность математического прогнозирования показателя заболеваемости гепатитом А в современных условиях оказалась малоэффективной. В современных условиях для адекватной оценки эпидемиологического риска развития гепатита А необходимо дополнять анализ данных регистрируемой заболеваемости мониторингом активности признаков активизации циркуляции возбудителя и параметрами популяционного специфического иммунитета. Такими предвестниками являются повышение частоты выявления анти-ВГА выше порогового значения в индикаторных возрастных группах детей 1–4 года и 5–9 лет, а также выявление РНК возбудителя в сточных водах до очистки.
Ключевые слова: гепатит А, эпидемиологический риск, прогнозирование, оценка рисков, вирусологический мониторинг, серологический мониторинг.
Для цитирования: Залесских А.А., Быстрова Т.Н., Полянина А.В. Комплексный подход к оценке эпидемиологического риска гепатита А в современных условиях // Здоровье населения и среда обитания. 2019. № 8 (317). С. 56–60. DOI: http://doi.org/10.35627/2219-5238/2019-317-8-56-60
ЛИТЕРАТУРА
1. Алейник М.Д., Стриковская И.Х., Трифонов В.А. Прогнозирование заболеваемости гепатитом А: Методические рекомендации. Горький: ГНИИЭМ, 1984. 16 с.
2. Бакин А.Н., Хрипков С.Ю. Математическое моделирование динамики риска инфекционного заболевания // Проблемы анализа риска. 2009. Т. 9. № 2. С. 24–31.
3. Быстрова Т.Н. Вирусный гепатит А (эпидемиологические закономерности, лабораторная диагностика): дис. … д-ра мед. наук. Н. Новгород, 1999. 284 с.
4. Быстрова Т.Н. Блохин К.В., Попкова М.И. Эпидемиологическая значимость определения специфических маркеров ВГА в воде методами ИФА и ОТ-ПЦР // Материалы научной конференции, посвященной 85-летию академика РАМН И.Н. Блохиной. Н. Новгород, 2006. C. 103–104.
5. Бутаев Т.М., Гадзиева Г.К., Отараева Н.И., Тибилов А.Г. Эпидемиологические особенности вирусного гепатита А на современном этапе в Республике Северная Осетия – Алания // Здоровье населения и среда обитания. 2014. № 2 (251). С. 34–36.
6. Василенко Н.Ф., Малецкая О.В., Тохов Ю.М. и др. Эпидемиологическая обстановка по Крымской геморрагической лихорадке на юге России в 2010 г. и прогноз на 2011 г. // Проблемы особо опасных инфекций. 2011. № 1. С. 13–15.
7. Вирусные гепатиты в Российской Федерации : аналитический обзор /Под ред. В.И. Покровского, А.А. Тотоляна. СПб.: ФБУН «НИИЭМ им. Пастера», 2016. Выпуск 10. 152 с.
8. Гепатит А: этиология, эпидемиология, диагностика, профилактика / Под ред. В.В. Шкарина. Н. Новгород : Изд-во НижГМА, 2015. 104 с.
9. Зайцева Т.А., Каравянская Т.Н., Чистяк В.М. и др. Роль водного фактора в возникновении вспышечной заболеваемости острыми кишечными инфекциями вирусной этиологии (на примере Хабаровского края) // Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2015. № 29. С. 17–25.
10. Курганова О.П. Районирование территории Амурской области по риску заболеваемости актуальными острыми кишечными инфекциями с возможной реализацией водного пути передачи // Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2015. № 29. С. 26–32.
11. Мукомолов C.Л., Михайлов М.И., Семененко Т.А. Бремя гепатита А в Российской Федерации: научный обзор // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2014. № 6. C. 24–34.
12. Пименов Н.Н., Чуланов В.П., Шипулин Г.А. Частота выявления антител к вирусу гепатита А среди населения Москвы: результаты 10-летнего исследования // Инфекционные болезни. 2014. Т. 12. № 2. С. 7–10.
13. Полибин Р.В. Эпидемиологические особенности и основные направления профилактики вирусного гепатита А на современном этапе: автореф. дис. ... канд. мед. наук. М., 2010. 26 с.
14. Сергевнин В.И. Некоторые теоретические и практические проблемы предэпидемической диагностики инфекционных болезней // Медицинский альманах. 2016. № 3. C. 133–135.
15. Трифонов В.А. Прогнозирование заболеваемости вирусным гепатитом А: автореф. дис. ... канд. мед. наук. СПб., 1985. 22 с.
16. Хакимова Д.А., Юсупова Г.М. Эпидемиологические особенности вирусного гепатита А на современном этапе // Материалы 52-й межрегиональной научно-практической медицинской конференции: «Современные аспекты здравоохранения: достижения и перспективы». Ульяновск, 2017. C. 123–125.
17. Эспер С.А., Гребенникова Т.В., Исагулянц М.Г., Кюрегян К.К., Ходорович А.М. Разработка методов и подходов обнаружения вирусов гепатита А и С на поверхностях для дальнейшего исследования внутрибольничной контаминации // Здоровье населения и среда обитания. 2014. № 2 (251). С. 34-36.
18. Amariei R., Willms AR, Bauch CT. The United States and Canada as a coupled epidemiological system: an example from hepatitis A. BMC Infectious Diseases, vol. 8:23. DOI: 10.1186/1471-2334-8-23
19. Gallone M.F., Desiante F., Gallone M.S. et al. Serosurveillance of hepatitis A in a region which adopted the universal mass vaccination. Medicine, 2017, vol. 9. DOI: 10.1097/MD.0000000000005884
20. Michaelis K., Wenzel J.J., Stark K. et al. Hepatitis A virus infections and outbreaks in asylum seekers arriving to Germany, September 2015 to March 2016. Emerging microbes & infections, 2017, vol. 4. DOI: 10.1038/emi.2017.11
21. The position papers regarding the hepatitis A vaccine. WHO. Weekly: Epidemiological Bulletin, 2012, vol. 28–29, pp. 261–276. Available at: http://www.who.int/wer/2012/wer8728_29/en/. (accessed: 14.06.2019).
22. Vaughan G., Goncalves Rossi L.M., Forbi J.C., et al. Hepatitis A virus: host interactions, molecular epidemiology and evolution. Infection, Genetics and Evolution, 2014, vol. 21, pp. 224–243. DOI: 10.1016/j.meegid.2013.10.023
23. Vaz J., Floyd C., Mason B., et al. Control of a community outbreak of hepatitis A in an area of low endemicity, Wales, 2016. Human vaccines & immunotherapeutics, 2017, vol. 10, pp. 2352–2356. DOI: 10.1080/21645515.2017.1347242
24. Wasley A., Fiore A., Bell B.P. Hepatitis A in the era of vaccination. Epidemiologic reviews, 2006, vol. 1, pp. 101–111. DOI: 10.1093/epirev/mxj012
Контактная информация:
Залесских Артем Александрович, старший научный сотрудник лаборатории эпидемиологии вирусных гепатитов, ФБУН ННИИЭМ им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
e-mail: gepatit-bystrova@yandex.ru

ДЕЙСТВИЕ КОРЕВОЙ ВАКЦИНЫ НА СОЗРЕВАНИЕ ДЕНДРИТНЫХ КЛЕТОК ЧЕЛОВЕКА IN VITRO В.Ю. Талаев, О.Н. Бабайкина, М.В. Талаева, Е.В. Воронина, И.Е. Заиченко

ФБУН «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии
и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Роспотребнадзора,
ул. Малая Ямская, д. 71, г. Нижний Новгород, 603950, Россия
Важнейшим средством борьбы с корью является живая коревая вакцина, высокая эпидемиологическая эффективность которой подтверждена полувековой практикой ее применения. Учитывая рост заболеваемости корью в последние годы, стоит вопрос о необходимости дополнительного повышения эффективности вакцинопрофилактики, в частности, за счет повышения иммуногенности применяемой вакцины. Для этого необходимо исследовать особенности действия имеющихся вариантов вакцины с целью выявления возможных путей их совершенствования. Исследовали действие коревой культуральной живой вакцины на созревание дендритных клеток человека – наиболее специализированных антигенпрезентирующих клеток, участвующих в индукции иммунного ответа. Показано, что инкубация незрелых моноцитарных дендритных клеток с вакциной in vitro запускает процесс их частичного созревания, что проявляется в увеличении количества клеток, несущих молекулы CD86, CD83 и ICOSL (CD275). В то же время у них наблюдается пониженный уровень экспрессии молекулы HLA-DR и хемокиновых рецепторов CCR7 и CXCR5, необходимых для миграции дендритных клеток в периферические лимфоидные органы. По нашему мнению, относительная слабость действия коревой вакцины на созревание дендритных клеток является фактором, ограничивающим иммуногенность вакцины, что необходимо учитывать при разработке новых вакцин против кори.
Ключевые слова: коревая вакцина, иммунный ответ, дендритные клетки, созревание.
Для цитирования: Талаев В.Ю., Бабайкина О.Н., Талаева М.В., Воронина Е.В., Заиченко И.Е. Действие коревой вакцины на созревание дендритных клеток человека in vitro // Здоровье населения и среда обитания. 2019. № 8 (317). С. 61–66. DOI: http://doi.org/10.35627/2219-5238/2019-317-8-61-66
ЛИТЕРАТУРА
1. О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2018 году: Государственный доклад [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://rospotrebnadzor.ru/documents/details.php?ELEMENT_ID=12053. (дата обращения: 06.06.2019).
2. Топтыгина А.П., Смердова М.А., Наумова М.А., Владимирова Н.П., Мамаева Т.А. Влияние особенностей популяционного иммунитета на структуру заболеваемости корью и краснухой // Инфекция и иммунитет. 2018. Т. 8. № 3. С. 341–348.
3. Шамсутдинова О.А. Живые аттенуированные вакцины для иммунопрофилактики // Инфекция и иммунитет. 2017. Т. 7. № 2. С. 107–116.
4. Alvarez D., Vollmann E.H., von Andrian U.H. Mechanisms and Consequences of Dendritic Cell Migration. Immunity, 2008, vol. 29, no. 3, pp. 325–342.
5. Choi Y.S., Kageyama R., Eto D., Escobar T.C., Johnston R.J., Monticelli L., et al. ICOS receptor instructs T follicular helper cell versus effector cell differentiation via induction of the transcriptional repressor Bcl6. Immunity, 2011, vol. 34, pp. 932–946.
6. Duhen T., Herschke F., Azocar O., Druelle J., Plumet S., Delprat C., et al. Cellular receptors, differentiation and endocytosis requirements are key factors for type I IFN response by human epithelial, conventional and plasmacytoid dendritic infected cells by measles virus. Virus Res., 2010, vol. 152, no. 1–2, pp. 115–125.
7. Grosjean I., Caux C., Bella C., Berger I., Wild F., Banchereau J., Kaiserlian D. Measles virus infects human dendritic cells and blocks their allostimulatory properties for CD4+ T cells. J. Exp. Med., 1997, vol. 186, no. 6, pp. 801–812.
8. Hickman C.J., Hyde T.B., Sowers S.B., Mercader S., McGrew M., Williams N.J., Beeler J.A., Audet S., Kiehl B., Nandy R., Tamin A., Bellini W.J. Laboratory characterization of measles virus infection in previously vaccinated and unvaccinated individuals. J. Infect. Dis., 2011, vol. 204, Suppl. 1, pp. 549–558.
9. Klagge I.M., Abt M., Fries B., Schneider-Schaulies S. Impact of measles virus dendritic-cell infection on Th-cell polarization in vitro. J. Gen. Virol., 2004, vol. 85, pp. 3239–3247.
10. Linterman M., Rigby R., Wong R. et al. Roquin differentiates the specialized functions of duplicated T cell costimulatory receptor genes CD28 and ICOS. Immunity, 2009, vol. 30, pp. 228–241.
11. Measles vaccines: WHO position paper (PDF). Weekly epidemiological record, 2009, vol. 84, no. 35, pp. 349–60.
12. Merad M., Sathe P., Helft J., Miller J., Mortha A. The Dendritic cell lineage: ontogeny and function of dendritic cells and their subsets in the steady state and the inflamed setting. Annu. Rev. Immunol., 2013, vol. 31, pp. 563–604.
13. Minor P.D. Live attenuated vaccines: historical successes and current challenges. Virology, 2015, vol. 479–480, pp. 379–392.
14. Ohgimoto K., Ohgimoto S., Ihara T., Mizuta H., Ishido S., Ayata M., Ogura H., Hotta H. Difference in production of infectious wild-type measles and vaccine viruses in monocyte-derived dendritic cells. Virus Res., 2007, vol. 123, no. 1, pp. 1–8.
15. Orenstein W.A., Strebel P.M., Papania M., Sutter R.W., Bellini W.J., Cochi S.L. Measles eradication: is it in our future? Am. L. Public Health, 2000, vol. 90, pp. 1521–1525.
16. Palucka K., Banchereau J., Mellman I. Designing vaccines based on biology of human dendritic cell subsets. Immunity, 2010, vol. 33, no. 4, pp. 464–478.
17. Rennick L.J., de Vries R.D., Carsillo T.J., Lemon K., van Amerongen G., Ludlow M., et al. Live-attenuated measles virus vaccine targets dendritic cells and macrophages in muscle of nonhuman primates. J. Virol., 2015, vol. 89, no. 4, pp. 2192–2200.
18. Schnorr J.J., Xanthakos S., Keikavoussi P., K?mpgen E., ter Meulen V., Schneider-Schaulies S. Induction of maturation of human blood dendritic cell precursors by measles virus is associated with immunosuppression. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A, 1997, vol. 94, no. 10, pp. 5326–5331.
19. Shivakoti R., Siwek M., Hauer D., Schultz K.L., Griffin D.E. Induction of dendritic cell production of type I and type III interferons by wild-type and vaccine strains of measles virus: role of defective interfering RNAs. J. Virol. 2013. vol. 87. no. 14. pp. 7816–7827.
20. Steinman R.M. The dendritic cell system and its role in immunogenicity. Annu. Rev. Immunol., 1991, vol. 9, pp. 271–296.
21. Woong-Kyung Suh. Life of T follicular helper cells. Mol. Cells, 2015, vol. 38, no. 3, pp. 195–201.
Контактная информация:
Талаев Владимир Юрьевич, доктор медицинских наук, профессор, ведущий научный сотрудник, заведующий лабораторией клеточной иммунологии ФБУН ННИИЭМ им. академика И.Н. Блохиной Роспотребнадзора
e-mail: talaev@inbox.ru

Language selection
Ссылки